Результати застосування йодмісткого засобу при вирощуванні коропових риби у закритих водоймах
Анотація
Метою дослідження було провести моніторинг ураження риби ектопаразитами та бактеріальними інфекціями та встановити ефективні дози нового йодмісткого засобу з метою профілактики хвороб риби. Дослідженнями встановлено ураження коропа ектопаразитами G. kobayashii на 43,32 %, L. cyprinacea – на 46,67 %, P. lusiana – на 31,71 % у рибних господарствах Сумської області. Обробка йодмістким засобом дала можливість знизити ступень ураження до 0,2 % в тому числі на гіродактильоз – 89,92-97,35 %; лерніозу – 79,13-95,91 %, філометроїдозу – 81,30-91,16 %, порівняно з моніторинговими результатами. При дослідженні на бактеріальні інфекціі виявлено, що контамінація коропа була більше E. coli у ПП «Шматуха» на 8,0 %; Aeromonas hydrophila на 47,97 % та Aeromonas salmonicida – на 31,39 %, Pseudomonas anguilliseptica – на 19,48 %, Streptococcus iniae – на 13,27 %, Micrococcus spp. – на 38,14 % у ТОВ «Ряснянське»; Staphylococcus aureus– на 21,37 %, Listeria monocytogenes – на 11,43 % у ТОВ «Бджола» ці показники були менше ніж в інших господарствах. Після обробки йодмістким засобом контамінація риби E. coli знизилась у ПП «Шматуха» на 98,96 %, у ТОВ «Бджола» – на 99,2 %, у ТОВ «Ряснянське» – на 84,32 %. Обсіменіння коропа A. hydrophila знизилось у ПП «Шматуха» на 94,51 %, у ТОВ «Бджола» – на 80,28 %, у ТОВ «Ряснянське» – на 99,15 %; A. salmonicida у ПП «Шматуха» на 97,23 %, у ТОВ «Бджола» – на 94,00 %, у ТОВ «Ряснянське» – на 79,06 %; S. aureus у ПП «Шматуха» на 92,15 %, у ТОВ «Бджола» – на 98,74 %, у ТОВ «Ряснянське» – на 93,89 %; S. iniae у ПП «Шматуха» на 80,90 %, у ТОВ «Бджола» – на 99,63 %, у ТОВ «Ряснянське» – на 83,30 %; L. monocytogenes зменшилась у ПП «Шматуха» на 96,25 %, у ТОВ «Бджола» – на 96,08 %, у ТОВ «Ряснянське» – на 98,13 %; Micrococcus spp. у ПП «Шматуха» на 93,74 %, у ТОВ «Бджола» – на 96,37 %, у ТОВ «Ряснянське» – на 92,26 % порівняно з результатами моніторингу. Практичною цінністю роботи є контроль поширення та розробка профілактичних заходів для знищення ектопаразитів та бактеріальних інфекцій коропа перед висадкою у водойми
Ключові слова
ектопаразити риби; екстенсивність інвазії; бактеріальна мікрофлора; контроль; профілактика
[1] Barreto, R., Barrois, B., Lambert, J., Malhotra-Kumar, S., Santos-Fernandes, V., & Monstrey, S. (2020). Addressing the challenges in antisepsis: focus on povidone iodine. International Journal of Antimicrobial Agents, 56(3), article number 106064. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2020.106064.
[2] Buchmann, K. (2022). Control of parasitic diseases in aquaculture. Parasitology, 149(14), 1985-1997. doi: 10.1017/ S0031182022001093.
[3] Chen, X., Lai, C., Wang, Y., Wei, L., & Zhong, Q. (2018). Disinfection effect of povidone-iodine in aquaculture water of swamp eel (Monopterus albus). PeerJ, 6, article number e5523. doi: 10.7717/peerj.5523.
[4] Dyshliuk, N., Usenko, S., Slobodyanyuk, N., Mazurkevych, T., & Stehnei, Zh. (2023). Microstructural analysis of frozen and salted fish and seafood meat. Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 14(1), 26-38. doi: 10.31548/ veterinary1.2023.26.
[5] European convention for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes. (1986). Retrieved from https://rm.coe.int/168007a67b.
[6] Fetherman, E.R., Neuschwanger, B., Praamsma, C., & Davis, T. (2023). Concentration, life stage, feeding, density, flow, and strain effects on formalin sensitivity in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Animals, 13(15), article number 2425. doi: 10.3390/ani13152425.
[7] Franceschini, R., Valiani, A., Ranucci, D., Roila, R., Palma, G., Agnetti, F., Di Giacinto, G., & Branciari, R. (2023). Eustrongylides spp. parasite risk management in Atherina boyeri from Lake Trasimeno. Italian Journal of Food Safety, 12(3), article number 11338. doi: 10.4081/ijfs.2023.11338.
[8] Harmansa Yilmaz, B., & Yavuzcan Yildiz, H. (2023). Anthelmintic effects of peppermint (Mentha piperita), lemon (Citrus limon), and tea tree (Melaleuca alternifolia) essential oils against Monogenean parasite (Dactylogyrus sp.) on carp (Cyprinus carpio). Helminthologia, 60(2), 125-133. doi: 10.2478/helm-2023-0019.
[9] Hartung, T. (2010). Comparative analysis of the revised Directive 2010/63/EU for the protection of laboratory animals with its predecessor 86/609/EEC – a t4 report. ALTEX, 27(4), 285-303. doi: 10.14573/altex.2010.4.285.
[10] He, R., Zhu, N., Chen, X., Liang, Q., Yao, G., Tian, Q., Zhou, F., & Ding, X. (2024). Experimental evidence of effective disinfectant to control the transmission of Micropterus salmoides rhabdovirus. Journal of Fish Diseases, 47(2), article number e13891. doi: 10.1111/jfd.13891.
[11] Hedayati, A., Darabitabar, F., Bagheri, T., Hedayati, E., & Van Doan, H. (2018). Histopathological impairment of common carp (Cyprinus carpio) induced through povidone-iodine exposure. Microscopy Research and Technique, 81(11), 1257-1260. doi: 10.1002/jemt.23131.
[12] Holembovska, N., Slobodianiuk, N., Israelian, V., Androshchiuk, O., & Maceyko, V. (2024). Influence of organic acids on organoleptic and structural and mechanical properties of freshwater hydrobiont meat. Animal Science and Food Technology, 15(1), 9-28. doi: 10.31548/animal.1.2024.09.
[13] Islam, S.I., Mahfuj, S., Baqar, Z., Asadujjaman, M., Islam, M.J., Alsiwiehri, N., Almehmadi, M., Sanjida, S., & Ahammad, F. (2024). Bacterial diseases of Asian sea bass (Lates calcarifer): A review for health management strategies and future aquaculture sustainability. Heliyon, 10(9), article number e29793. doi: 10.1016/j. heliyon.2024.e29793.
[14] Kochmann, J., Laier, M., Klimpel, S., Wick, A., Kunkel, U., Oehlmann, J., & Jourdan, J. (2023). Infection with acanthocephalans increases tolerance of Gammarus roeselii (Crustacea: Amphipoda) to pyrethroid insecticide deltamethrin. Environmental Science and Pollution Research International, 30, 55582-55595. doi: 10.1007/ s11356-023-26193-0.
[15] Law of Ukraine No. 249 “On the Procedure for Carrying out Experiments and Experiments on Animals by Scientific Institutions”. (2012, March). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/z0416-12#Text.
[16] Ma, Q., Zhao, G., Liu, J., Chen, I.T., Wei, Y., Liang, M., Dai, P., Nuez-Ortin, W.G., & Xu, H. (2024). Effects of a phytobioticbased additive on the growth, hepatopancreas health, intestinal microbiota, and Vibrio parahaemolyticus resistance of Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei. Frontiers in Immunology, 15, article number 1368444. doi: 10.3389/fimmu.2024.1368444.
[17] Magouz, F.I., Moustafa, E.M., Abo-Remela, E.M., Halawa, M.R., Barakaat, P.M., & Omar, A.A. (2024). Summer mortality syndrome bacterial pathogens in farmed Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Open Veterinary Journal, 14(1), 53-69. doi: 10.5455/OVJ.2024.v14.i1.7.
[18] Mohamadi Yalsuyi, A., Forouhar Vajargah, M., Hajimoradloo, A., Mohammadi Galangash, M., Prokić, M.D., & Faggio, C. (2022). Can Betadine (10% povidone-iodine solution) act on the survival rate and gill tissue structure of Oranda goldfish (Carassius auratus)? Veterinary Research Communications, 46, 389-396. doi: 10.1007/s11259021-09862-8.
[19] Mon-On, N., Surachetpong, W., Mongkolsuk, S., & Sirikanchana, K. (2018). Roles of water quality and disinfectant application on inactivation of fish pathogenic Streptococcus agalactiae with povidone iodine, quaternary ammonium compounds and glutaraldehyde. Journal of Fish Diseases, 41(5), 783-789. doi: 10.1111/jfd.12776.
[20] Moravec, F., Nagasawa, K., Nitta, M., & Tawa, A. (2019). New records of philometrids (Nematoda: Philometridae) from marine fishes off Japan, including description of Philometra kidakoi sp. n. and Congerinema japonicum gen. et sp. n. Folia Parasitologica, 66, article number 021. doi: 10.14411/fp.2019.021.
[21] Nicholson, P., Mon-On, N., Jaemwimol, P., Tattiyapong, P., & Surachetpong, W. (2020). Coinfection of tilapia lake virus and Aeromonas hydrophila synergistically increased mortality and worsened the disease severity in tilapia (Oreochromis spp.). Aquaculture, 520, article number 734746. doi: 10.1016/j.aquaculture.2019.734746.
[22] Othmen, Z.O., Jerbi, M.A., Timoumi, R., Besbes, R., Haouas, Z., Achour, L., Elazomi, A., Zaet, A., Zourgui, L., & Kacem, A. (2024). Liver histopathological and oxidative stress assessment by a combination of formaldehyde and oxytetracycline in sea bass (Dicentrarchuslabrax L). Open Veterinary Journal, 14(2), 630-639. doi: 10.5455/ OVJ.2024.v14.i2.3.
[23] Peter, N., Dörge, D.D., Cunze, S., Schantz, A.V., Skaljic, A., Rueckert, S., & Klimpel, S. (2023). Raccoons contraband – The metazoan parasite fauna of free-ranging raccoons in central Europe. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife, 20, 79-88 doi: 10.1016/j.ijppaw.2023.01.003.
[24] Pravdová, M., Kolářová, J., Grabicová, K., Janáč, M., Randák, T., & Ondračková, M. (2023). Response of parasite community composition to aquatic pollution in common carp (Cyprinus carpio L.): A semi-experimental study. Animals, 13(9), article number 1464. doi: 10.3390/ani13091464.
[25] Rahmati-Holasoo, H., Marandi, A., Shokrpoor, S., Goodarzi, T., Ziafati Kafi, Z., Ashrafi Tamai, I., & Ebrahimzadeh Mousavi, H. (2023). Clinico-histopathological and phylogenetic analysis of protozoan epibiont Epistylis wuhanensis associated with crustacean parasite Lernaea cyprinacea from ornamental fish in Iran. Scientific Reports, 13, article number 14065. doi: 10.1038/s41598-023-41368-y.
[26] Renner, E.D., & Duggan, I.C. (2024). Season, size, and sex: factors influencing monogenean prevalence and intensity on Gambusia affinis in New Zealand. Parasitology Research, 123, article number 228. doi: 10.1007/ s00436-024-08241-x.
[27] Rigos, G., Padrós, F., Golomazou, E., & Zarza, C. (2024). Antiparasitic approaches and strategies in European aquaculture, with emphasis on Mediterranean marine finfish farming: Present scenarios and future visions. Reviews in Aquaculture, 16(2), 622-643. doi: 10.1111/raq.12857.
[28] Saijuntha, W., Sithithaworn, P., Petney, T.N., & Andrews, R.H. (2021). Foodborne zoonotic parasites of the family Opisthorchiidae. Research in Veterinary Science, 135, 404-411. doi: 10.1016/j.rvsc.2020.10.024.
[29] Shamsi, S. (2019). Seafood-borne parasitic diseases: A “one-health” approach is needed. Fishes, 4(1), article number 9. doi: 10.3390/fishes4010009.
[30] Szentmáry, N., Shi, L., Daas, L., & Seitz, B. (2020). Diagnostics and management approaches for Acanthamoeba keratitis. Expert Opinion on Orphan Drugs, 8(7), 227-236. doi: 10.1080/21678707.2020.1791081.
[31] Umasuthan, N., Xue, X., Caballero-Solares, A., Kumar, S., Westcott, J.D., Chen, Z., Fast, M.D., Skugor, S., Nowak, B.F., Taylor, R.G., & Rise, M.L. (2020). Transcriptomic profiling in fins of atlantic salmon parasitized with sea lice: Evidence for an early imbalance between chalimus-induced immunomodulation and the host’s defense response. International Journal of Molecular Sciences, 21(7), article number 2417. doi: 10.3390/ijms21072417.
[32] Williams, M., Hernandez-Jover, M., & Shamsi, S. (2020). A Critical appraisal of global testing protocols for zoonotic parasites in imported seafood applied to seafood safety in Australia. Foods, 9(4), article number 448. doi: 10.3390/foods9040448.
[33] Xu, P., Xu, X.B., Khan, A., Fotina, T., & Wang, S.H. (2021). Antibiofilm activity against Staphylococcus aureus and content analysis of Taraxacum Officinale phenolic extract. Polish Journal of Veterinary Sciences, 24(2), 243-251. doi: 10.24425/pjvs.2021.137659.
[34] Zhou, S., Dong, J., Liu, Y., Yang, Q., Xu, N., Yang, Y., & Ai, X. (2021). Antiparasitic efficacy of herbal extracts and active compound against Gyrodactylus kobayashii in Carassius auratus. Frontiers in Veterinary Science, 8, article number 665072. doi: 10.3389/fvets.2021.665072.
[35] Zhou, S., Yang, Q., Dong, J., Liu, Y., Xu, N., Yang, Y., & Ai, X. (2022). Anthelmintic efficacy of palmarosa oil and curcuma oil against the fish Ectoparasite Gyrodactylus kobayashii (monogenean). Animals, 12(13), article number 1685. doi: 10.3390/ani12131685.