Диференційна діагностика хронічної неплідності високопродуктивних корів
Анотація
Непліддя корів та телиць було і залишається найбільш актуальною проблемою скотарства. Статеві органи і молочна залоза несуть підвищене функціональне навантаження, яке пов’язане з вагітністю, родами і лактацією. Метою науково-виробничого дослідження було визначення поширення симптомів хронічної незворотної неплідності у корів айрширської породи, вибракованих внаслідок багатократних штучних осіменінь. У ході дослідження було застосовано аналітичний, структурно-порівняльний і статистичний методи, а також послідовно використано впродовж двох етапів модифіковану диференційну пальпаторну діагностику клінічного стану органів репродукції у ділянці «яєчник+яйцевід» з латеральною локалізацією. Результати дослідження показали, що корови, у яких in vivо діагностовано симптоми хронічних злипливих сальпінгітів та овосальпінгітів (52,17 %), тобто незворотну форму неплідності, мали достовірно вищу (+28,05 %; P < 0,01) молочну продуктивність за кращу лактацію, у порівнянні з тими, у яких цих патологій не встановлено. Крім того в групі вибракованих внаслідок численних неефективних осіменінь корів було виявлено суміжні гонадопатії: від 4,35 до 10,87 % виражено гіпотрофічних станів яєчників, 4,35 % симптомів склерозу гонад і 17,39 % випадків кістозних фолікулярних дегенерацій. У 73,91 % самиць було встановлено наявність статевої циклічності з незміненою функцією яєчників у фолікулярну фазу та у 84,78 % – у лютеїнову фазу циклу. Застосування в умовах виробництва диференційної пальпаторної діагностики дозволяє в умовах in vivо прогнозувати тенденцію до втрати генетичних ресурсів (здатності яєчниками корів зберігати генеративну і секреторну функції) у високопродуктивних корів внаслідок хронізації запальних гінекологічних патологій, що сприятиме удосконаленю медикаментозних і біотехнологічних схем терапевтичних заходів з профілактики неплідності поголів'я дійного стада
Ключові слова
молочні корови; генетичні ресурси; хронічна неплідність; яєчники; яйцеводи; хронічні запальні гінекологічні процеси; сальпінгіти; спайки
[1] Cardoso Consentini, C.E., Wiltbank, M.C., & Sartori, R. (2021). Factors that optimize reproductive efficiency in dairy herds with an emphasis on timed artificial insemination programs. Animals, 11(2), article number 301. doi: 10.3390/ani11020301.
[2] Chaikol, W., Yadmak, C., Yama, P., Jitjumnong, J., Sangkate, M., Ukrit, W., Promsao, N., Suriard, A., Mektrirat, R., Panatuk, J., Van Doan, H., Wang, Ch.K., Tang, P-Ch., & Moonmanee, T. (2022). Ovarian luteal category at the time of exogenous progesterone treatment alters preovulatory follicle size and pregnancy outcome but not initial GnRH treatment in repeat-breeder crossbred dairy heifers submitted to the 7-day fixed-time AI protocol. Veterinary and Animal Science, 17, article number 100257. doi: 10.1016/j.vas.2022.100257.
[3] European convention for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes. (1986). Retrieved from https://rm.coe.int/168007a67b.
[4] Glosson, K.M., Zhang, X., Bascom, S.S., Rowson, A.D., Wang, Z., & Drackley, J.K. (2020). Negative dietary cationanion difference and amount of calcium in prepartum diets: Effects on milk production, blood calcium, and health. Journal of Dairy Science, 103(8), 7039-7054. doi: 10.3168/jds.2019-18068.
[5] González Moreno, C., Torres Luque, A., Galvao, K.N., & Otero, M.C. (2022). Bacterial communities from vagina of dairy healthy heifers and cows with impaired reproductive performance. Research in Veterinary Science, 142, 15-23. doi: 10.1016/j.rvsc.2021.11.007.
[6] Hryshchuk, H., Kovalyova, L., Huralska, S., Yevtukh, L., & Kovalyov, P. (2023). Histological changes in the uterine and ovarian walls in pyometra. Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies. Series: Veterinary Sciences, 25(109), 59-66. doi: 10.32718/nvlvet10910.
[7] ISO/IEC 17025:2005. (2006). Retrieved from http://online.budstandart.com/ua/catalog/doc-page.html?id_ doc=50873.
[8] Jeong, J.-K., & Kim, I.-H. (2022). Risk factors for repeat breeder dairy cows and their impacts on reproductive performance. Korean Journal of Veterinary Research, 62(2), article number e15. doi: 10.14405/kjvr.20220003.
[9] Kasimanickam, R.K., & Kasimanickam, V.R. (2020). IFNT, ISGs, PPARs, RXRs and MUC1 in day 16 embryo and endometrium of repeat-breeder cows, with or without subclinical endometritis. Theriogenology, 158, 39-49. doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.09.001.
[10] Khoirani, K., & Karni, I. (2023). Identification of reproductive disorders in female cattle at local farms in woha sub-district, bima Regency. Lukman HY. Jurnal Kedokteran Hewan, 17(3), 96-99. doi: 10.21157/j.ked.hewan. v17i3.26553.
[11] Klimkovetskaya, L., Karpovskyi, V., Gutyj, B., & Hryshchuk, I. (2024). Relationship of calcium and phosphorus content with indicators of reproductive ability in cattle. Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies. Series: Veterinary Sciences, 26(113), 184-188. doi: 10.32718/nvlvet11328.
[12] Kudo, H., Sugiura, T., Higashi, S., Takahash, M., Kamiya, Sh., Tamura, Yu., & Usu, M. (2021). Characterization of reproductive microbiota of primiparous cows during early postpartum periods in the presence and absence of endometritis. Frontiers in Veterinary Science, 18(8), article number 736996. doi: 10.3389/fvets.2021.736996.
[13] Kyaw, H.M., Sato, H., Tagami, T., Yanagawa, Y., Nagano, M., & Katagiri, S. (2022). Effects of milk osteopontin on the endometrial epidermal growth factor profile and restoration of fertility in repeat breeder dairy cows. Theriogenology, 184, 26-33. doi: 10.1016/j.theriogenology.2022.02.008.
[14] Lapp, R., Rottgen, V., Viergutz, T., Weitzel, J.M., & Vernunft, A. (2020). Induction of cystic ovarian follicles (COFs) in cattle by using an intrafollicular injection of indomethacin. The Journal of Reproduction and Development, 66(2), 181-188. doi: 10.1262/jrd.2019-107.
[15] Law of Ukraine No. 249 “On the Procedure for Carrying out Experiments and Experiments on Animals by Scientific Institutions”. (2012, March). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/z0416-12#Text.
[16] Madureira, A.M.L., Burnett, T.A., Boyd, C.T., Baylão, M., & Cerri, R.L.A. (2023). Use of intravaginal lactic acid bacteria prepartum as an approach for preventing uterine disease and its association with fertility of lactating dairy cows. Journal of Dairy Science, 106(7), 4860-4873. doi: 10.3168/jds.2022-22147.
[17] Pérez-Marín, С.С., & Quintel, L.A. (2023). Current insights in the repeat breeder cow syndrome. Animals, 13(13), article number 2187. doi: 10.3390/ani13132187.
[18] Praxitelous, A., Panagiotis, D.K., Tsaousioti, A., Brozos, C., Schmicke, M., Boscos, C., & Tsousis, G. (2023). Comparison of uterine involution and the resumption of ovarian cyclicity between lame and sound holstein cows. Animals 13(23), article number 3645. doi: 10.3390/ani13233645.
[19] Seely, C.R., Leno, B.M., Kerwin, A.L., Overton, T.R., & McArt, J.A.A. (2021). Association of sub-clinical hypocalcemia dynamics with dry matter in-take, milk yield, and blood minerals during the peri-parturient period. Journal of Dairy Science, 104(4), 4692-4702. doi: 10.3168/jds.2020-19344.
[20] Sidashova, S., Gutyj, B., Martyshuk, T., & Shnaider, V. (2024). Chronic latent inflammatory processes of reproductive organs of dairy cows. Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies. Series: Veterinary Sciences, 26(113), 202-211. doi: 10.32718/nvlvet11330.
[21] Sidashova, S.O., Popova, I.M., Roman, L.G., & Chorniy, V.A. (2022). Use of supervision in vocationally oriented (dual) training of veterinary professionals and students. Special Humanitarian Issue of Ukrainian Scientists. European Scientific e-Journal, 2(17), 60-65. doi: 10.47451/ped2022-03-03.
[22] Tanimura, K., Uematsu, M., Kitahara, G., Osawa, T., & Sasaki, Y. (2022). Longitudinal effect of repeat breeding in Japanese Black beef cattle at a low parity on subsequent fertility in commercial cow-calf operations. Theriogenology, 189, 177-182. doi: 10.1016/j.theriogenology.2022.05.016.
[23] Tasara, T., Meier, A.B., Wambui, J., Whiston, R., Stevens, M., Chapwanya, A., & Bleu, U. (2023). Interrogating the diversity of vaginal, endometrial, and fecal microbiomes in healthy and metritis dairy cattle. Animals 13(7), article number 1221. doi: 10.3390/ani13071221.
[24] Vallejo-Timaran, D.A., Reyes, J., Gilbert, R.O., Lefebvre, R.C., Palacio-Baena, L.G., & Maldonado-Estrada, J.G. (2021). Incidence, clinical patterns, and risk factors of postpartum uterine diseases in dairy cows from high-altitude tropical herds. Journal of Dairy Science. 104(8), 9016-9026. doi: 10.3168/jds.2020-18692.
[25] Várhidi, Z., Csikó, G., Bajcsy, Á.C., & Jurkovich V. (2024). Uterine disease in dairy cows: A comprehensive review highlighting new research areas. Veterinary Sciences, 11(2), article number 66. doi: 10.3390/vetsci11020066.
[26] Xu, X., Bai, J., Lu, K., Xiao, L., Qin, Y., Gao, M., & Liu, Y. (2023) Association of metabolic and endocrine disorders with bovine ovarian follicular cysts. Animals, 13(21), article number 3301. doi: 10.3390/ani13213301.
[27] Yama, P., et al. (2022). In vivo follicular and uterine arterial indices as an indicator of successful hormonal stimulation for inactive ovaries in repeat-breeder crossbred dairy cows using a short-term progesteronebased programme. Animals, 12(3), article number 292. doi: 10.3390/ani12030292.