Визначення впливу ферментно-пробіотичного комплексу на продуктивність тварин
Анотація
Під час відлучення від кролематки відбувається виробничий та кормовий стрес у кроленят, в результаті чого знижується резистентність організму. Молодняк у перехідний період часто має розлади шлунково-кишкового тракту та значну втрату ваги. Пробіотичні штами мікроорганізмів та ферменти є безпечною альтернативою для стимуляції росту та підтримки імунітету кроликів. Метою дослідження було визначити вплив добавок до основного раціону на гематологічний статус, біохімічні та продуктивні показники кролів. Використані методи: зоотехнічний, гематологічний, біохімічний, статистичний. В дослідних групах, де застосовували ферменти з пробіотиками, спостерігали збільшення живої ваги на 30 добу експерименту: у першій дослідній групі на 4,18 %, у другій – на 9,69 %, у третій – на 18,72 %. На момент досягнення забійного віку у кролів жива вага збільшилась на 5,47 %, у другій на – 11,0 %, та у третій на – 12,6 %. Середньодобовий приріст у групах, де використовували комплексну добавку, був більше відповідно на: 6,64 %; 12,58 %, 32,86 %. За весь період проведення експерименту захворювання шлунково-кишкового тракту спостерігали у трьох кролів контрольної групи, які отримали лікування. Конверсія корму була краща у першій дослідній групі на 90,73 %, у другій – на 76,58 %, у третій – на 82,92 %, порівняно до контролю. У групі, де застосовували три пробіотичні штами, зафіксовано збільшення еритроцитів на 68,19 % (Р<0,05), гемоглобіну на 28,44 %, лейкоцитів на 72,17 %. У кролів дослідних груп відбулось покращення ліпідного обміну на фоні зниження холестерину у першій на 25,3 %, другої – на 36,6 %, третьої – на 39,4 %. Збільшилось засвоєння білку та альбуміну у дослідних групах: у першій на 15,33 %, у другій – на 24,04 %, у третій – на 28,57 %. Покращився мінеральний обмін у тварин дослідних груп за рахунок підвищення вмісту кальцію у першій на 10,1 %, другої – на 8,7 %, третьої – на 17,9 %. Практичною цінністю роботи є збільшення продуктивності та зниження шлунково-кишкових розладів за рахунок застосування ферментів та пробіотичних штамів бактерій до основного раціону
Ключові слова
альтернативні стимулятори росту; приріст живої маси; конверсія корму; захворюваність; метаболізм кролів
[1] Abdel-Wareth, A.A., Elkhateeb, F.S., Ismail, Z.S., Ghazalah, A.A., & Lohakare, J. (2021). Combined effects of fenugreek seeds and probiotics on growth performance, nutrient digestibility, carcass criteria, and serum hormones in growing rabbits. Livestock Science, 251, article number 104616. doi: 10.1016/j. livsci.2021.104616.
[2] Alayande, K.A., Aiyegoro, O.A., & Ateba, C.N. (2020). Probiotics in animal husbandry: Applicability and associated risk factors. Sustainability, 12(3), article number 1087. doi: 10.3390/su12031087.
[3] Amoah, K., Huang, Q.C., Tan, B.P., Zhang, S., Chi, S.Y., Yang, Q.H., Liu, H.Y., & Dong, X.H. (2019). Dietary supplementation of probiotic Bacillus coagulans ATCC 7050, improves the growth performance, intestinal morphology, microflora, immune response, and disease confrontation of Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei. Fish & Shellfish Immunology, 87, 796-808. doi: 10.1016/j.fsi.2019.02.029.
[4] Bohatko, A., & Utechenko, M. (2024). Microstructural analysis of meat and internal organs of broiler chickens using a probiotic biological product. Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 15(1), 24-47. doi: 10.31548/ veterinary1.2024.24.
[5] Chen, S.Y., Deng, F., Jia, X., Liu, H., Zhang, G.W., & Lai, S.J. (2019). Gut microbiota profiling with differential tolerance against the reduced dietary fibre level in rabbit. Scientific Reports, 9(1), article number 288. doi: 10.1038/s41598-018-36534-6.
[6] Cheng, P., Wang, Y., Liang, J., Wu, Y., Wright, A., & Liao, X. (2018). Exploratory analysis of the microbiological potential for efficient utilization of fiber between lantang and duroc pigs. Frontiers in Microbiology, 9, article number 1342. doi: 10.3389/fmicb.2018.01342.
[7] Cullere, M., & Dalle Zotte, A. (2018). Rabbit meat production and consumption: State of knowledge and future perspectives. Meat Science, 143, 137-146. doi: 10.1016/j.meatsci.2018.04.029.
[8] Dabbou, S., Ferrocino, I., Gasco, L., Schiavone, A., Trocino, A., Xiccato, G., Barroeta, A.C., Maione, S., Soglia, D., Biasato, I., Cocolin, L., Gai, F., & Nucera, D.M. (2020). Antimicrobial effects of black soldier fly and yellow mealworm fats and their impact on gut microbiota of growing rabbits. Animals, 10(8), article number 1292. doi: 10.3390/ani10081292.
[9] Daskalova, A., Kucheruk, K., Zasekin, D., & Hryb, J. (2023). Effect of probiotic drugs and their metabolites on the microflora of digestive canal of broiler chickens. Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 14(3), 46-64. doi: 10.31548/veterinary3.2023.46.
[10] Du, R., Jiao, S., Dai, Y., An, J., Lv, J., Yan, X., Wang, J., & Han, B. (2018). Probiotic Bacillus amyloliquefaciens C-1 improves growth performance, stimulates GH/IGF-1, and regulates the gut microbiota of growth-retarded beef calves. Frontiers in Microbiology, 9, article number 2006. doi: 10.3389/fmicb.2018.02006.
[11] Elghandour, M.M.Y., Tan, Z.L., Abu Hafsa, S.H., Adegbeye, M.J., Greiner, R., Ugbogu, E.A., Cedillo Monroy, J., & Salem, A.Z.M. (2020). Saccharomyces cerevisiae as a probiotic feed additive to non and pseudo-ruminant feeding: A review. Journal of Applied Microbiology, 128(3), 658-674. doi: 10.1111/jam.14416.
[12] European convention for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes. (1986). Retrieved from https://rm.coe.int/168007a67b.
[13] Gandy, K.A.O., Zhang, J., Nagarkatti, P., & Nagarkatti, M. (2019). The role of gut microbiota in shaping the relapse-remitting and chronic-progressive forms of multiple sclerosis in mouse models. Scientific Reports, 9(1), article number 6923. doi: 10.1038/s41598-019-43356-7.
[14] Garkavenko, T.O., Gorbatyuk, O.I., Kozytska, T.G., Anriashchuk, V.O., Garkavenko, V.M., Dybkova, S.M., & Azirkina I.M. (2021) Methodical recommendations for determining the sensitivity of microorganisms to antibacterial drugs. Kyiv: DNDILVSE.
[15] Grosu, N., & Caisîn, L. (2020). Growth performance of growing pigs fed diets containing probiotics and prebiotics. Animal Science and Food Technology, 11(1), 17-23. doi: 10.31548/animal2020.01.017.
[16] Gryshchenko, V.A., Danchenko, O.O., Tkachuk, S.A., Fotina, T.I., Zazharskyi, V.V., & Brygadyrenko, V.V. (2023). Lipid composition of blood plasma and epithelium of the jejunal mucosa in calves with dyspepsia and its correction. Regulatory Mechanisms in Biosystems, 14(2), 319-324. doi: 10.15421/022347.
[17] Hartung, T. (2010). Comparative analysis of the revised Directive 2010/63/EU for the protection of laboratory animals with its predecessor 86/609/EEC – a t4 report. ALTEX - Alternatives to Animal Experimentation, 27(4), 285-303. doi: 10.14573/altex.2010.4.285.
[18] Hossain, M.I., Sadekuzzaman, M., & Ha, S.D. (2017). Probiotics as potential alternative biocontrol agents in the agriculture and food industries: A review. Food Research International, 100, 63-73. doi: 10.1016/j. foodres.2017.07.077.
[19] Kadja, L., Dib, A.L., Lakhdara, N., Bouaziz, A., Espigares, E., & Gagaoua, M. (2021). Influence of three probiotics strains, Lactobacillus rhamnosus GG, Bifidobacterium animalis subsp. Lactis BB-12 and Saccharomyces boulardii CNCM I-745 on the biochemical and haematological profiles and body weight of healthy rabbits. Biology, 10(11), article number 1194. doi: 10.3390/biology10111194.
[20] Law of Ukraine No. 249 “On the Procedure for Carrying out Experiments and Experiments on Animals by Scientific Institutions”. (2012, March). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/z0416-12#Text.
[21] Li, Z., Chen, M., Zhang, R., Wang, Z., He, H., Wan, Z., Li, H., Cai, H., Chen, Z., Li, M., & Xu, H. (2023). Clostridium butyricum ameliorates the effect of coprophagy prevention on hepatic lipid synthesis in rabbits via the gut-liver axis. International Journal of Molecular Sciences, 24(24), article number 17554. doi: 10.3390/ijms242417554.
[22] Li, Z., He, H., Ni, M., Wang, Z., Guo, C., Niu, Y., Xing, S., Song, M., Wang, Y., Jiang, Y., Yu, L., Li, M., & Xu, H. (2022). Microbiome-metabolome analysis of the immune microenvironment of the cecal contents, soft feces, and hard feces of hyplus rabbits. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2022, article number 5725442. doi: 10.1155/2022/5725442.
[23] Maltecca, C., Bergamaschi, M., & Tiezzi, F. (2020). The interaction between microbiome and pig efficiency: A review. Journal of Animal Breeding and Genetics, 137(1), 4-13. doi: 10.1111/jbg.12443.
[24] Mosteller, F., & Fisher, R.A. (1948). Questions and answers #14. In The American statistician (pp. 30-31). doi: 10.2307/2681650. JSTOR 2681650.
[25] Saha, S., Fukuyama, K., Debnath, M., Namai, F., Nishiyama, K., & Kitazawa, H. (2023). Recent advances in the use of probiotics to improve meat quality of small ruminants: A review. Microorganisms, 11(7), article number 1652. doi: 10.3390/microorganisms11071652.
[26] Shkromada, O., Pikhtirova, A., Pecka-Kiełb, E., Skliar, O., & Musiienko, Y. (2022). Use of probiotic Bacillus megaterium NCH 55 for treatment of subclinical mastitis in cows – preliminary study. Macedonian Veterinary Review, 45(2) 209-214. doi: 10.2478/macvetrev-2022-0023.
[27] Velasco-Galilea, M., Guivernau, M., Piles, M., Viñas, M., Rafel, O., Sánchez, A., Ramayo-Caldas, Y., GonzálezRodríguez, O., & Sánchez, J.P. (2020). Breeding farm, level of feeding and presence of antibiotics in the feed influence rabbit cecal microbiota. Animal Microbiome, 2, article number 40. doi: 10.1186/s42523-020-00059-z.
[28] Wang, Z., He, H., Chen, M., Ni, M., Yuan, D., Cai, H., Chen, Z., Li, M., & Xu, H. (2023). Impact of coprophagy prevention on the growth performance, serum biochemistry, and intestinal microbiome of rabbits. BMC Microbiology, 23(1), article number 125. doi: 10.1186/s12866-023-02869-y.
[29] Wolf, A.J., & Underhill, D.M. (2018). Peptidoglycan recognition by the innate immune system. Nature Reviews Immunology, 18(4), 243-254. doi: 10.1038/nri.2017.136.
[30] Wu, Z., Zhou, H., Li, F., Zhang, N., & Zhu, Y. (2019). Effect of dietary fiber levels on bacterial composition with age in the cecum of meat rabbits. MicrobiologyOpen, 8(5), article number e00708. doi: 10.1002/mbo3.708.
[31] Xing, S.C., Huang, C.B., Mi, J.D., Wu, Y.B., & Liao, X.D. (2019). Bacillus coagulans R11 maintained intestinal villus health and decreased intestinal injury in lead-exposed mice by regulating the intestinal microbiota and influenced the function of faecal microRNAs. Environmental Pollution, 255(2), article number 113139. doi: 10.1016/j.envpol.2019.113139.
[32] Ye, D., Ding, X., Pang, S., Gan, Y., Li, Z., Gan, Q., & Fang, S. (2023). Seasonal variations in production performance, health status, and gut microbiota of meat rabbit reared in semi-confined conditions. Animals, 14(1), article number 113. doi: 10.3390/ani14010113.