Чисельність меланінсинтезувальних мікроорганізмів за мінерального удобрення і вапнування сірого лісового ґрунту

Ірина Михайлівна Малиновська, Микола Адамович Ткаченко, Лариса Петрівна Коломієць, Ірина Миколаївна Вергунова, Іван Васильович Мартинюк
Завантажити статтю Читати статтю

Анотація

Дослідження основних закономірностей розповсюдження мікроорганізмів, що синтезують меланіни, які є попередниками і складовими гумусових молекул, в ґрунтах агроценозів є актуальним завданням науки. Метою представленої роботи було встановлення впливу агрохімічних чинників на чисельність меланінсинтезувальних мікроміцетів і бактерій у сірому лісовому ґрунті. В роботі було використано мікробіологічний, лабораторно-аналітичний, статистичний методи. Вперше встановлено, що чисельність меланінсинтезувальних мікроміцетів є мінімальною у ґрунті варіанту без добрив, вапнування однією дозою за гідролітичною кислотністю сприяє збільшенню їхньої чисельності на 86,8 %, внесення мінеральних добрив у дозі N30Р30К45 – в 2,0 рази, сумісне застосування вапна і мінеральних добрив – у 2,94 рази. Збільшення дози мінеральних добрив в 1,5 рази призводить до зростання кількості колонієутворювальних одиниць (КУО) меланінсинтезувальних мікроміцетів порівняно із одинарною дозою добрив у 2,54 рази, збільшення дози добрив у 2,0-2,62 рази, що співпадає із результатами аналізу вмісту гумусу у ґрунті цих варіантів – він перевищує вміст гумусу у варіанті із одинарною дозою добрив на 26,5 та 16,3 % відповідно (коефіцієнт кореляції становить 0,811). Чисельність меланінсинтезувальних бактерій в сірому лісовому ґрунті на 2-3 порядки вища за чисельність меланінсинтезувальних мікроміцетів, однак, закономірності впливу антропогенних чинників на їхню чисельність співпадають із встановленими для мікроміцетів: вапнування однією дозою за гідролітичною кислотністю призводить до збільшення чисельності меланінсинтезувальних бактерій на 26,1  %, внесення мінеральних добрив у дозі N30Р30К45 – в 2,03 рази, сумісне застосування вапна і мінеральних добрив – у 2,48 рази. Збільшення дози мінеральних добрив у 1,5 рази призводить до зростання чисельності меланінсинтезувальних бактерій порівняно із одинарною дозою добрив у 5,8 рази, збільшення дози добрив у 2,0 рази – відповідно у 13,3 рази. Коефіцієнт кореляції між чисельністю меланінсинтезувальних бактерій і вмістом гумусу у ґрунті складає 0,417. Результати представлених досліджень можуть бути використані при розробленні рекомендацій щодо заходів підвищення вмісту гумусу в ґрунтах сільськогосподарського використання

Ключові слова

меланінсинтезувальні мікроорганізми; мікроміцети; бактерії; азотобактер; вапнування; мінеральне удобрення; гумус

[1] Abd-El-Aziz, A.S., Abed, N.N., Mahfouz, A.Y., & Fathy, R.M. (2024). Production and haracterization of melanin pigment from black fungus Curvularia soli AS21 ON076460 assisted gamma rays for promising medical uses. Microbial Cell Factories, 23, article number 68. doi: 10.1186/s12934-024-02335-y.

[2] Alef, K., & Nannipieri, P. (1995). Methods in applied soil microbiology and biochemistry. Elsevier: Academy Press. doi: 10.1016/B978-0-12-513840-6.X5014-9.

[3] Barreto, J.V.O., Casanova, L.M., Junior, A.N., Reis-Mansur, M.C.P.P., & Vermelho, A.B. (2023). Microbial pigments: Major groups and industrial applications. Microorganisms, 11(12), article number 2920. doi: 10.3390/ microorganisms11122920.

[4] Baskaran, Р., Ekblad, А., Soucémarianadin, L., Hyvönen, R., Schleucher, J., & Lindah, B. (2019). Nitrogen dynamics of decomposing Scots pine needle litter depends on colonizing fungal species. FEMS Microbiology Ecology, 95(6), article number fiz059. doi: 10.1093/femsec/fiz059.

[5] Dang, P., Li, C., Lu, Ch., Zhang, M., Huang, T., Wan, Ch., Wang, H., Chen, Y., Qin, X., Liao, Yu., & Siddique, K.H.M. (2022). Effect of fertilizer management on the soil bacterial community in agroecosystems across the Globe. Agriculture, Ecosystems & Environment, 326, article number 107795. doi: 10.1016/j.agee.2021.107795.

[6] Duarte, A., Cachada, A., & Rocha-Santos, T. (2017). Soil pollution: From monitoring to remediation (1st Ed.). London: Academic Press.

[7] Efimova, I.V., Smirnova, O.V., & Bessarabov, V.I. (2022). Oxidation of organic substrates of different natures in the presence of humic and hematomelanic acids. Technologies and Engineering, 6, 82-88. doi: 10.30857/27865371.2022.6.8.

[8] El-Zawawy, N.A., Kenawy, E.R., Ahmed, S., & El-Sapagh, S. (2024). Bioproduction and optimization of newly characterized melanin pigment from Streptomyces djakartensis NSS-3 with its anticancer, antimicrobial, and radioprotective properties. Microbial Cell Factories, 23(1), article number 23. doi: 10.1186/s12934-023-02276-y.

[9] Feszterová, M., & Hudec, M. (2022). The distribution of metallic elements among humus substances in soil from volcanic rocks. Sustainability, 14(24), article number 16427. doi: 10.3390/su142416427.

[10] Gerke, J. (2018). Concepts and misconceptions of humic substances as the stable part of soil organic matter: A review. Agronomy, 8(5), article number 76. doi: 10.3390/agronomy8050076.

[11] Jacoby, R., Peukert, M., Succurro, A., Koprivova, A., & Kopriva, S. (2017). The role of soil microorganisms in plant mineral nutrition – current knowledge and future directions. Frontiers in Plant Science, 8, article number 1617. doi: 10.3389/fpls.2017.01617.

[12] Knutson, C.M., Plunkett, M.H., Liming, R.A., & Barney, B.M. (2018). Efforts toward optimization of aerobic biohydrogen reveal details of secondary regulation of biological nitrogen fixation by nitrogenous compounds in Azotobacter vinelandii. Applied Microbiology and Biotechnology, 102, 10315-10325. doi: 10.1007/s00253-0189363-0.

[13] Kulikova, N.A., & Perminova, I.V. (2021). Interactions between humic substances and microorganisms and their implications for nature-like bioremediation technologies. Molecules, 26(9), article number 2706. doi: 10.3390/ molecules26092706.

[14] Malynovska, I. (2017). Influence of heavy metal pollution on the number, physiological and biochemical activiti of Аzotobacter and melanin-synthesizing micromicetes. Biotechnologia Acta, 10(3), 65-71. doi: 10.15407/ biotech10.03.065.

[15] Malynovska, I., Kaminskyi, V., Zadubynna, Ye., Kurhak, V., & Karpenko, V. (2023). The influence of agrotechnical measures on the number of melanin-synthesizing microorganisms. Scientific Horizons, 26(8), 52-61. doi: 10.48077/scihor8.2023.52.

[16] Noar, J.D., & Bruno-Bárcena, J.M. (2018). Azotobacter vinelandii: The source of 100 years of discoveries and many more to come. Microbiology, 164(4), 421-436. doi: 10.1099/mic.0.000643.

[17] Paul, E.A. (2015). Soil microbiology, ecology and biochemistry (4th Ed.). Fort Collins: Elsevier Science. doi: 10.1016/ C2011-0-05497-2.

[18] Tran-Ly, A.N., Reyes, C., Schwarze, F.W.M.R., & Ribera, J. (2020a). Microbial production of melanin and its various applications. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 36, article number 170. doi: 10.1007/s11274020-02941-z.

[19] Tran-Ly, A.N., Ribera, J., Schwarze, F.W., Brunelli, M., & Fortunato, G. (2020b). Fungal melanin-based electrospun membranes for heavy metal detoxification of water. Sustainable Materials and Technologies, 23, article number e00146. doi: 10.1016/j.susmat.2019.e00146.

[20] Zhdanova, N.N., & Vasilevskaya, A.N. (1988). Melanin-containing mushrooms in extreme conditions. Kyiv: Naukova Dumka.

Malynovska, I., Tkachenko, M., Kolomiiets, L., Vergunova, I., & Martyniuk, I. (2024). Number of melanin-synthesising microorganisms under mineral fertilisation and liming of Albebeluvisoil. Scientific Horizons, 27(4), 86-97. https://doi.org/10.48077/scihor4.2024.86