Визначення посівних якостей насіння зразків конюшини лучної різного біологічного статусу
Анотація
Процес створення сортів кормових культур, які адаптуються до мінливих умов навколишнього середовища, є ефективним способом подолання зміни клімату з мінімальними втратами. Температура впливає на час і швидкість проростання насіння, а це в свою чергу забезпечує рівномірність сходів та сумісність конюшини при вирощуванні з іншими культурами, здатність скористатися ідеальними умовами посіву. Метою дослідження було визначення температури та часу, необхідних для досягнення максимальної схожості, та діапазону, в якому проростання відбувалося для чотирьох зразків конюшини лучної різного біологічного статусу (сорти, дикоросла та місцева популяція). Визначення схожості та енергії проростання зразків конюшини лучної проводили відповідно до діючих методик ДСТУ 4138-2002 та ДСТУ 2949-94. при температурі від 3 до 33 °C з кроком 10 °C. Встановлено, що оптимальна температура для проростання насіння конюшини лучної чортирьох досліджуваних зразків на фільтрувальному папері становить від 13 °C до 33 °C, на піску – від 13 °C до 23 °C. В результаті проведених досліджень виділився сорт Vytis, який за всіма показниками перевищив інші зразки при пророщуванні на фільтрувальному папері, та сорт Трускавчанка, який виділився за досліджуваними ознаками при пророщуванні на піску. Кращі показники схожості відмічено в дикорослої популяції при температурі 13 °C. Отримані висновки дають пояснення нерівномірних сходів при посіві зразків конюшини лучної різного біологічного статусу в колекційних та селекційних розсадниках, що спостерігається в польових умовах. Результати, отримані в цьому дослідженні, можуть бути використані для розробки елементів технології посіву конюшини лучної за різних температурних режимів
Ключові слова
Trifolium pratense L.; сорт; дикоросла популяція; місцева популяція; температура; схожість
[1] Baxter, L., Grey, T., Tucker, J., & Hancock, D. (2019). Optimizing temperature requirements for clover seed germination. Agrosystems, Geosciences & Environment, 2(1), 1-7. doi: 10.2134/age2018.11.0059.
[2] Bayram, C.Ş., Yalınkılıç, N.A., & Başbağ, S. (2024). Investigation of germination and early seedling development of some flax (Linum usitatissimum L.) seeds under salt stress. Manas Journal of Agriculture Veterinary and Life Sciences, 14(1), 64-70. doi: 10.53518/mjavl.1424429.
[3] Buranji, I., Varga, I., Lisjak, M., Iljkic, D., & Antunović, M. (2019). Morphological characteristic of fiber flax seedlings regard to different pH water solution and temperature. Journal of Central European Agriculture, 20(4), 1135-1142. doi: 10.5513/JCEA01/20.4.2484.
[4] Büyükyıldız, S., Yıldırım, M., & Kurt, A.N. (2023). The effect of salt stress on the germination and seedling growth parameters in birdsfoot trefoil (Lotus corniculatus L.). Black Sea Journal of Agriculture, 6(2), 126-133. doi: 10.47115/bsagriculture.1173277.
[5] Chaleb, W., Ahmed, L.Q., Escolab-Gutierrez, A.J., & Julier, B. (2021). The history of domestication and selection of lucerne: A new perspective from the genetic diversity for seed germination in response to temperature and scarification. Frontiers in Plant Science, 11, article number 578121. doi: 10.3389/fpls.2020.578121.
[6] Chu, L., Gao, Y., Chen, L., McCullough, P., Jespersen, D., Sapkota, S., Bagavathiannan, M., & Yu, J. (2022). Impact of environmental factors on seed germination and seedling emergence of white clover (Trifolium repens L.). Agronomy, 12(1), article number 190. doi: 10.3390/agronomy12010190.
[7] Convention on Biological Diversity. (1992, June). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/ show/995_030#Text.
[8] Convention on International Trade in Endangered Species of Wild Fauna and Flora. (1979, June). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/995_129#Text.
[9] Costa, A.S., Dias, L.S., & Dias, A.S. (2019). Imbibition, germination, and early seedling growth responses of light purple and yellow seeds of red clover to distilled water, sodium chloride, and nutrient solution. Sci, 1(2), article number 51. doi: 10.3390/sci1020051.
[10] DSTU 2949-94. (1996). Seeds of agricultural crops. Terms and definitions. Retrieved from https://online. budstandart.com/ua/catalog/doc-page.html?id_doc=91432.
[11] DSTU 4138-2002. (2004). Seeds of agricultural crops. Quality determination methods. Retrieved from https:// online.budstandart.com/ua/catalog/doc-page?id_doc=91465.
[12] Harris, C., & Ratnieks, F. (2022). Clover in agriculture: Сombined benefits for bees, environment, and farmer. Journal of Insect Conservation, 26, 339-357. doi: 10.1007/s10841-021-00358-z.
[13] Herman, G., Gantner, R., Guberac, V., Žalac, H., & Bukvić, G. (2022). Temperature and water solution pH effects on crimson clover (Trifolium incarnatum L.) imbibition and seedling traits. Journal of Central European Agriculture, 23(4), 749-756. doi: 10.5513/JCEA01/23.4.3640.
[14] Lina, A.Q., & Escobar-Gutiérrez, A.J. (2022). Unexpected intraspecific variability of perennial ryegrass (Lolium perenne L.) in response to constant temperature during germination and initial heterotrophic growth. Frontiers in Plant Science, 13, article number 856099. doi: 10.3389/fpls.2022.856099.
[15] López, A.S., Marchelli, P., Batlla, D., Lopez, D.K., & Arana, M.V. (2019). Seed responses to temperature indicate different germination strategies among Festuca pallescens populations from semi-arid environments in North Patagonia. Agricultural and Forest Meteorology, 272-273, 81-90. doi: 10.1016/j.agrformet.2019.04.002.
[16] Oleksiak, V., Stasiv, O., Baistruk-Hlodan, L., & Bilovus, H. (2023). Optimization of temperature modes for seed germination of perennial reegrass (Lolium perenne L.). Foothill and Mountain Agriculture and Stockbreeding, 74(1), 95-109. doi: 10.32636/01308521.2023-(74)-1-7.
[17] Petrauskas, G., Norkevičienė, E., Stukonis, V., & Kemešytė, V. (2020). Phenotypic traits for wild red clover seed yield under drought conditions. Czech Journal of Genetics and Plant Breeding, 56(4), 140-149. doi: 10.17221/111/2019-CJGPB.
[18] Radinovic, I., Vasiljević, S., Brankovic, G., Zivanovic, T., & Prodanovic, S. (2022). Biodiversity of a red clover collection based on morpho-productive traits. Acta Agriculturae Serbica, 27(53), 57-65. doi: 10.5937/ AASer2253057R.
[19] Sawicka, B., Krochmal-Marczak, B., Sawicki, J., Skiba, D., Pszczółkowski, P., Barbaś, P., Vambol, V., Messaoudi, M., & Farhan, A. (2023). White clover (Trifolium repens L.) cultivation as a means of soil regeneration and pursuit of a sustainable food system model. Land, 12(4), article number 838. doi: 10.3390/land12040838.
[20] Shiade, S.R.G., & Boelt, B. (2020). Seed germination and seedling growth parameters in nine tall fescue varieties under salinity stress. Acta Agriculturae Scandinavica, Section B – Soil & Plant Science, 70(6), 485-494. doi: 10.1080/09064710.2020.1779338.
[21] Szczerba, A., Płażek, A., Pastuszak, J., Kopeć, P., Hornyák, M., & Dubert, F. (2021). Effect of low temperature on germination, growth, and seed yield of four soybean (Glycine max L.) cultivars. Agronomy, 11(4), article number 800. doi: 10.3390/agronomy11040800.
[22] Talwar, S., Bamel, K., & Prabhavathi. (2023). Impact of elevated temperature and carbon dioxide on seed physiology and yield. Plant Science Today, 99(sp3), 85-91. doi: 10.14719/pst.2059.
[23] Tucak, M., Ravlić, M., Horvat, D., & Čupić, T. (2021). Improvement of forage nutritive quality of alfalfa and red clover through plant breeding. Agronomy, 11(11), article number 2176. doi: 10.3390/agronomy11112176.
[24] Vivanco, P., Oliveira, J.A., & Martín, I. (2021). Optimal germination conditions for monitoring seed viability in wild populations of fescues. Spanish Journal of Agricultural Research, 19(3), article number e0804. doi: 10.5424/ sjar/2021193-18025.
[25] Yu, J., Sharpe, S.M., & Boyd, N.S. (2020). Germination and emergence of common beggar’s-tick (Bidens alba) seeds at two different stages of afterripening as affected by environmental factors. Weed Science, 68(5), 503509. doi: 10.1017/wsc.2020.45.