Показники аквакультури молоді Cherax Quadricarinatus за різних схем годівлі
Анотація
Аквакультура ракоподібних є одним з основних джерел цінного харчового білка, який за своїми властивостями не може бути замінений іншими білками тваринного або рослинного походження. Використання поживних та збалансованих кормів у годівлі раків сприяє підвищенню продуктивності та отриманню екологічно чистої та безпечної продукції. Метою дослідження є визначення ефекту від згодовування розробленого комбікорму для декаподів. Встановлено, що згодовування корму Decapoda сприяє більш інтенсивному збільшенню розмірів раків. Зокрема, приріст довжини становив 1,1±0,1 см за період з 90 по 120 добу вирощування та 1,2±0,1 см за період з 120 по 150 добу. При використанні корму Decapoda приріст довжини рачків протягом першого місяця вирощування був у 1,8 рази більшим, ніж у рачків, яких годували кормом Ancistrus menu. У період вирощування від 120 до 150 днів приріст довжини раків у дослідній групі був у 2,0 рази більшим, порівняно з раками контрольної групи за той самий період. При згодовуванні ракам Декаподи інтенсивність приросту маси тіла була в середньому в 1,4 рази вищою, порівняно з крабами контрольної групи. При цьому виживання в цій групі становило 74 %, що на 20 % перевищує кількість живих особин порівняно з контрольною групою раків. Результати дослідження можуть бути використані при розробці технологічної схеми відтворення та вирощування раків
Ключові слова
Ancistrus menu; аквакультура; корм Decapoda; приріст довжини; виживання; маса
[1] Boyd, C.E., McNevin, A.A., & Davis, R.P. (2022). The contribution of fisheries and aquaculture to the global protein supply. Food Security, 14, 805-827. doi: 10.1007/s12571-021-01246-9.
[2] Cheng, Y., & Wu, S. (2019). Effect of dietary astaxanthin on the growth performance and nonspecific immunity of red swamp crayfish Procambarus clarkii. Aquaculture, 512, article number 734341. doi: 10.1016/j. aquaculture.2019.734341.
[3] Crandall, K.A., & Grave, S.D. (2017). An updated classification of the freshwater crayfishes (Decapoda: Astacidea) of the world, with a complete species list. Journal of Crustacean Biology, 37(5), 615-653. doi: 10.1093/jcbiol/rux070.
[4] Díaz, F.C., Tropea, C., Stumpf, L., & López Greco, L-S. (2017). Effect of food restriction on female reproductive performance in the redclaw crayfish Cherax quadricarinatus (Parastacidae, Decapoda). Aquaculture Research, 48(8), 4228-4237. doi: 10.1111/are.13244.
[5] Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. (2010). Retrieved from https://eur-lex.europa.eu/LexUriServ/LexUriServ. do?uri=OJ:L:2010:276:0033:0079:En:PDF.
[6] Haubrock, P.J., Oficialdegui, F.J., Zeng, Y., Patoka, J., Yeo, D.C.J., & Kouba, A. (2021). The redclaw crayfish: A prominent aquaculture species with invasive potential in tropical and subtropical biodiversity hotspots. Reviews in Aquaculture, 13(3), 1488-1530. doi: 10.1111/raq.12531.
[7] Hou, S., Li, J., Zhang, Y., Huang, J., Wu, X., & Cheng, Y. (2021). Effects of fish meal replacement with protein mixtures on growth, gonad development and amino acid composition of pre-adult red swamp crayfish, Procambarus clarkii (Girard, 1852) (Decapoda, Cambaridae). Crustaceana, 94(10), 1161-1186. doi: 10.1163/15685403-bja10150.
[8] Hrynevych, N.E., Zharchynska, V.S., Svitelskyi, M.M., Khomiak, O.A., & Sliusarenko, A.O. (2022). Promising object of aquaculture of crustaceans Cherax quadricarinatus (Von Martens, 1868): Biology, technology (review). Aquatic Bioresources and Aquaculture, 1, 47-62. doi: 10.32851/wba.2022.1.4.
[9] Jones, C.M., & Valverde, C. (2020). Development of mass production hatchery technology for the red claw crayfish Cherax quadricarinatus. Freshwater Crayfish, 25(1), 1-6. doi: 10.5869/fc.2020.v25-1.001.
[10] Kukhtyn, M., Salata, V., Berhilevych, O., Malimon, Z., Tsvihun, A., Gutyj, B., & Horiuk, Y. (2020). Evaluation of storage methods of beef by microbiological and chemical indicators. Potravinarstvo Slovak Journal of Food Sciences, 14, 602-611. doi: 10.5219/1381.
[11] Law of Ukraine No. 27 “On the Protection of Animals from Cruelty”. (2006, February). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/3447-15#Text.
[12] Liu, C., Meng, F., Tang, X., Shi, Y., Wang, A., Gu, Z., & Pan, Z. (2018). Comparison of nonvolatile taste active compounds of wild and cultured mud crab Scylla paramamosain. Fisheries Science, 84, 897-907. doi: 10.1007/ s12562-018-1227-0.
[13] Méndez-Martínez, Y., Ceseña, C.E., Luna-González, A., García-Guerrero, M.U., Martinez-Porchas, M., CampaCordova, A.I., & Cortés-Jacinto, E. (2021). Effects of different dietary protein energy ratios on growth, carcass amino acid and fatty acid profile of male and female Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) pre-adults. Aquaculture Nutrition, 27, 2481-2496. doi: 10.1111/anu.13379.
[14] Nanda, P.K., Das, A.K., Dandapat, P., Dhar, P., Bandyopadhyay, S., Dib, A.L., Lorenzo, J.M., & Gagaoua, M. (2021). Nutritional aspects, flavour profile and health benefits of crab meat based novel food products and valorisation of processing waste to wealth: A review. Trends in Food Science & Technology, 112, 252-267. doi: 10.1016/j. tifs.2021.03.059.
[15] Nightingale, J., Jones, G., McCabe, G., & Stebbing, P. (2021). Effects of different diet types on growth and survival of white-clawed crayfish Austropotamobius pallipes in Hatcheries. Frontiers in Ecology and Evolution, 9, article number 607100. doi: 10.3389/fevo.2021.607100.
[16] Qian, D., Yang, X., Xu, C., Chen, C., Jia, Y., Gu, Z., & Li, E. (2021). Growth and health status of the red claw crayfish, Cherax quadricarinatus, fed diets with four typical plant protein sources as a replacement for fish meal. Aquaculture Nutrition, 27(3), 795-806. doi: 10.1111/anu.13224.
[17] Rigg, D.M., Seymour, J.E., Courtney, R.L., & Jones, C.M. (2020). A review of juvenile Redclaw crayfish Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) aquaculture: Global production practices and innovation. Freshwater Crayfish, 25(1), 13-30. doi: 10.5869/fc.2020.v25-1.013.
[18] Shehata, A.I., Alhoshy, M., Wang, T., Mohsin, M., Wang, J., Wang, X., Han, T., Wang, Y., & Zhang, Z. (2022). Dietary supplementations modulate the physiological parameters, fatty acids profile and the growth of red claw crayfish (Cherax quadricarinatus). Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 107(1), 308-328. doi: 10.1111/jpn.13704.
[19] Shehata, A.I., Wang, T., Habib, Y.J., Wang, J., Fayed, W.M., & Zhang, Z. (2020). The combined effect of vitamin E, arachidonic acid, Haemtococcus pluvialis, nucleotides and yeast extract on growth and ovarian development of crayfish (Cherax quadricarinatus) by the orthogonal array design. Aquaculture Nutrition, 26(6), 2007-2022. doi: 10.1111/anu.13142.
[20] Shyamal, S., Das, S., Guruacharya, A., Mykles, D.L., & Durica, D.S. (2018). Transcriptomic analysis of crustacean molting gland (Y-organ) regulation via the mTOR signaling pathway. Scientific Reports, 8, article number 7307. doi: 10.1038/s41598-018-25368-x.
[21] Stumpf, L., Sarmiento Cárdenas, P.N., Timpanaro, S., & López Greco, L. (2019). Feasibility of compensatory growth in early juveniles of “red claw” crayfish Cherax quadricarinatus under high density conditions. Aquaculture, 510, 302-310. doi: 10.1016/j.aquaculture.2019.05.053.
[22] Sun, Y., Shan, X., Li, D., Liu, X., Han, Z., Qin, J., Guan, B., Tan, L., Zheng, J., Wei, M., & Jia, Y. (2023). Analysis of the differences in muscle nutrition among individuals of different sexes in redclaw crayfish, Cherax quadricarinatus. Metabolites, 13(2), article number 190. doi: 10.3390/metabo13020190.
[23] Vecchioni, L., Marrone, F., Chirco, P., Arizza, V., Tricarico, E., & Arculeo, M. (2022). An update of the known distribution and status of Cherax spp. in Italy (Crustacea, Parastacidae). BioInvasions Records, 11(4), 1045-1055. doi: 10.3391/bir.2022.11.4.22.