Вплив різних концентрацій фосфору на тканинний та внутрішньоклітинний метаболізм Cyprinus Carpio L. у водному середовищі існування

Наталія Євгеніївна Гриневич, Микола Михайлович Світельський, Олександр Андрійович Хом’як, Оксана Василівна Іщук, Світлана Матковська
Завантажити статтю Читати статтю

Анотація

Актуальність дослідження зумовлена тим, що під впливом різних чинників водного середовища фіксуються зміни швидкості та спрямованості метаболічних процесів гідробіонтів. Метою дослідження є вивчення впливу різного вмісту неорганічного фосфору у водному середовищі на показники фосфорнокальцієвого обміну у риб. Використовували методи тонкошарової хроматографії та варіаційної статистики. Аналізували залозисті тканини зябер, печінки та нирок риб. Для вивчення впливу неорганічного фосфору водного середовища на деякі показники внутрішньоклітинного метаболізму виділяли мітохондрії в осморегуляторних органах. Встановлено, що при підвищенні концентрації фосфору у водному середовищі до 0,3-0,6 мг/л відбувається його накопичення в печінці, зябрах і зменшення в нирках, при цьому концентрація в сироватці крові риб підтримується на відносно постійному рівні. Підвищення концентрації неорганічного фосфору у водному середовищі суттєво впливає на процеси енергоутворення в мітохондріях печінки риб. Зміна вмісту фосфору в середовищі існування риб має значний вплив на біоенергетичні процеси в тканинах, що проявляється у зміні вмісту аденозинтрифосфату, активності лужної фосфатази. Значні зміни цих показників спостерігаються в зябрах та нирках. Результати досліджень можуть бути використані для формування адаптаційно-компенсаторних регуляторних механізмів в організмі гідробіонтів при їх пристосуванні до певних умов вирощування та розмноження

Ключові слова

Cyprinus carpio; печінка; зябра; нирки; сироватка крові; жовч

[1] Ai, F., Wang, L., Li, J., & Xu, Q. (2019). Effects of a-ketoglutarate (AKG) supplementation in low phosphorous diets on the growth, phosphorus metabolism and skeletal development of juvenile mirror carp (Cyprinus carpio). Aquaculture, 507, 393-401. doi: 10.1016/j.aquaculture.2019.03.047.

[2] Boyd, C.E., D’Abramo, L.R., Glencross, B.D., Huyben, D.C., Juarez, L.M., Lockwood, G.S., McNevin, A.A., Tacon, A.G.J., Teletchea, F., Tomasso, J.R., Jr, Tucker, C.S., & Valenti, W.C. (2020). Achieving sustainable aquaculture: Historical and current perspectives and future needs and challenges. Journal of the World Aquaculture Society, 51(3), 578633. doi: 10.1111/jwas.12714.

[3] Costa, J.M., Sartori, M.M.P., Nascimento, N.F.D., Kadri, S.M., Ribolla, P.E.M., Pinhal, D., & Pezzato, L.E. (2018). Inadequate dietary phosphorus levels cause skeletal anomalies and alter osteocalcin gene expression in zebrafish. International Journal of Molecular Sciences, 19, article number 364. doi: 10.3390/ijms19020364.

[4] Dilelis, F., Freitas, L.W., Quaresma, D.V., Reis, T.L., Souza, C.S., & Lima, C.A.R. (2021). Determination of true ileal digestibility of phosphorus of fish meal in broiler diets. Animal Feed Science and Technology, 272, article number 114742. doi: 10.1016/j.anifeedsci.2020.114742.

[5] Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. (2010). Retrieved from https://eur-lex.europa.eu/LexUriServ/LexUriServ. do?uri=OJ:L:2010:276:0033:0079:En:PDF.

[6] Fedoniuk, T.P., Fedoniuk, R.H., Romanchuk, L.D., Petruk, A.A., & Pazych, V.M. (2019). The influence of landscape structure on the quality index of surface waters. Journal of Water and Land Development, 43(1), 56-63. doi: 10.2478/jwld-2019-0063.

[7] Fedonyuk, T.P., Fedoniuk, R.H., Zymaroieva, A.A., Pazych, V.M., & Aristarkhova, E.O. (2019). Phytocenological approach in biomonitoring of the state of aquatic ecosystems in Ukrainian Polesie. Journal of Water and Land Development, 44(I-III), 65-74. doi: 10.24425/JWLD.2019.127047.

[8] Gao, S., Sun, P., Ren, H., Chen, J., Shen, Y., Wang, Z., Huang, Y., & Chen, W. (2023). Effects of dietary phosphorus deficiency on the growth performance, hepatic lipid metabolism, and antioxidant capacity of Yellow River Carp Cyprinus carpio haematopterus. Journal of Aquatic Animal Health, 35(1), 41-49. doi: 10.1002/aah.10177.

[9] He, Y., Song, Z., Dong, X., Zheng, Q., Peng, X., & Jia, X. (2022). Candida tropicalis prompted effectively simultaneous removal of carbon, nitrogen and phosphorus in activated sludge reactor: Microbial community succession and functional characteristics. Bioresource Technology, 348, article number 126820. doi: 10.1016/j. biortech.2022.126820.

[10] Hrynevych, N., Svitelskyi, M., Solomatina, V., Ishchuk, О., Matkovska, S., Sliusarenko, A., Khomiak, O., Trofymchuk, A., Pukalo, P., & Zharchynska, V. (2022). Acclimatization of fish to the higher calcium levels in the water environment. Potravinarstvo Slovak Journal of Food Sciences, 16, 101-113. doi: 10.5219/1732.

[11] Huang, C-L., Gao, B., Xu, S., Huang, Y., Yan, X., & Cui, S. (2019). Changing phosphorus metabolism of a global aquaculture city. Journal of Cleaner Production, 225, 1118-1133. doi: 10.1016/j.jclepro.2019.03.298.

[12]  Huser, B.J., Bajer, P.G., Kittelson, S., Christenson, S., & Menken, K. (2021). Changes to water quality and sediment phosphorus forms in a shallow, eutrophic lake after removal of common carp (Cyprinus carpio). Inland Waters, 12(1), 33-46. doi: 10.1080/20442041.2020.1850096.

[13] Knöpfel, T., Himmerkus, N., Günzel, D., Bleich, M., Hernando, N., & Wagner, C.A. (2019). Paracellular transport of phosphate along the intestine. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology, 317, 233241. doi: 10.1152/ajpgi.00032.2019.

[14] Lall, S.P. (2022). The minerals. In Fish Nutrition (469-554). Cambridge: Academic Press.

[15] Law of Ukraine No. 27 “On the Protection of Animals from Cruelty”. (2006, February). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/3447-15#Text.

[16] Lei, Y., Sun, Y., Wang, X., Lin, Z., Bu, X., Wang, N., Du, Z., Qin, J., & Chen, L. (2021). Effect of dietary phosphorus on growth performance, body composition, antioxidant activities and lipid metabolism of juvenile Chinese mitten crab (Eriocheir sinensis). Aquaculture, 531, article number 735856. doi: 10.1016/j.aquaculture.2020.735856.

[17] Musharraf, M., & Khan, M.A. (2019). Dietary phosphorus requirement of fingerling Indian major carp, Labeo rohita (Hamilton). Journal of the World Aquaculture Society, 50, 469-484. doi: 10.1111/jwas.12521.

[18] Pinkina, T., Zymaroieva, A., Matkovska, S., Svitelskyi, M., Ishchuk, O., & Fediuchka, M. (2019). Trophic characteristics of Lymnaea stagnalis (Mollusca: Gastropoda: Lymnaeidae) in toxic environment. Ekologia, 38(3), 292-300. doi: 10.2478/eko-2019-0022.

[19] Pouil, S., Bustamante, P., Warnau, M., & Metian, M. (2018). Overview of trace element trophic transfer in fish through the concept of assimilation efficiency. Marine Ecology Progress Series, 588, 243-254. doi: 10.3354/ meps12452.

[20] Romanchuk, L., Fedonyuk, T., Pazych, V., Fedonyuk, R., Khant, G., & Petruk, A. (2018). Assessment of the stability of aquatic ecosystems development on the basis of indicators of the macrophytes fluctuating asymmetry. Eastern-European Journal of Enterprise Technologies, 4(10), (94), 54-61. doi: 10.15587/1729-4061.2018.141055.

[21] Saurette, M., & Alexander, R.T. (2019). Intestinal phosphate absorption: The paracellular pathway predominates? Experimental Biology and Medicine, 244, 646-654. doi: 10.1177/1535370219831220.

[22] Solomatina, V.D., Pinkina, T.V., & Svitelskyi, M.M. (2018). The effect of the temperature of rearing young fish of different species on the content of organophosphorus high-energy compounds in their tissues. Water Bioresources and Aquaculture, 2, 79-88.

[23] Solomatina, V.D., Pinkina, T.V., Svitelskyi, M.M., & Feduchka, M.I. (2019). Changes in calcium and phosphorus metabolism in fish with their warm-water growing. Water Bioresources and Aquaculture, 1, 51-62. doi: 10.32851/ wba.2019.1.5.

[24]  Souders 2nd, C.L., Liang, X., Wang, X., Ector, N., Zhao, Y.H., & Martyniuk, C.J. (2018). High-throughput assessment of oxidative respiration in fish embryos: Advancing adverse outcome pathways for mitochondrial dysfunction. Aquatic Toxicology, 199, 162-173. doi: 10.1016/j.aquatox.2018.03.031.

[25] Sugiura, S.H. (2018). Phosphorus, Aquaculture, and the Environment. In Reviews in Fisheries Science &amp. Aquaculture, 26(4), 515-521. doi: 10.1080/23308249.2018.1471040.

[26] Sun, Y., Li, B., Zhang, X., Chen, M., Tang, H., & Yu, X. (2018). Dietary available phosphorus requirement of crucian carp (Carassius auratus). Aquaculture Nutrition, 24(5), 1494-1501. doi: 10.1111/anu.12686.

[27] Svitelskyi, M.M., Ishchuk, O.V., Fediuchka, M.I., Klymchyk, O.M., Pryshchepa, M.A., & Pylypchuk, N.V. (2020). Intracellular calcium metabolism of fish under hypercalcemic conditions of the aquatic environment. Bulletin National University of Water and Environmental Engineering, 1(89), 63-72.

[28] Wang, L., Fan, Z., Zhang, Y., Wu, D., Li, J., & Xu, Q. (2022). Effect of phosphorus on growt h performance, intestinal tight junctions, Nrf2 signaling pathway and immune response of juvenile mirror carp (Cyprinus carpio) fed different α-ketoglutarate levels. Fish & Shellfish Immunology, 120, 271-279. doi: 10.1016/j.fsi.2021.11.040.

[29] Wang, P., Li, X., Xu, Z., Ji, D., He, M., Dang, J., & Leng, X. (2021). The digestible phosphorus requirement in practical diet for largemouth bass (Micropterus salmoides) based on growth and feed utilization. Aquaculture and Fisheries, 7(6), 632-638. doi: 10.1016/j.aaf.2020.11.002.

[30] Wang, Y., Geng, Y., Shi, X., Wang, S., Yang, Z., Zhang, P., & Liu, H. (2022). Effects of dietary phosphorus levels on growth performance, phosphorus utilization and intestinal calcium and phosphorus transport-related genes expression of juvenile chinese soft-shelled turtle (Pelodiscus sinensis). Animals, 12, article number 3101. doi: 10.3390/ani12223101.

[31] Xu, C.M., Yu, H.R., Zhang, Q., Chen, B.B., Li, L.Y., Qiu, X.Y., Qi, T., Liu, J.Q., & Shan, L.L. (2021). Dietary phosphorus requirement of coho salmon (Oncorhynchus kisutch) alevins cultured in freshwater. Aquaculture Nutrition, 27, 2427-2435. doi: 10.1111/anu.13374.

[32] Yang, Q., Liang, H., Maulu, S., Ge, X., Ren, M., Xie, J., & Xi, B. (2021). Dietary phosphorus affects growth, glucolipid metabolism, antioxidant activity and immune status of juvenile blunt snout bream (Megalobrama amblycephala). Animal Feed Science and Technology, 274, article number 114896. doi: 10.1016/j.anifeedsci.2021.114896.

[33] Yu, H., Yang, Q., Liang, H., Ren, M., Ge, X., & Ji, K. (2021). Effects of stocking density and dietary phosphorus levels on the growth performance, antioxidant capacity, and nitrogen and phosphorus emissions of juvenile blunt snout bream (Megalobrama amblycephala). Aquaculture Nutrition, 27, 581-591. doi: 10.1111/anu.13208.

[34] Zhang, J., Zhang, S., Lu, K., Wang, L., Song, K., Li, X., Zhang, C., & Rahimnejad, S. (2022). Effects of dietary phosphorus level on growth, body composition, liver histology and lipid metabolism of spotted seabass (Lateolabrax maculatus) reared in freshwater. Aquaculture and Fisheries, 8(5), 528-537. doi: 10.1016/j. aaf.2022.02.004.

[35] Zhao, J., Liu, M., & Chen, M. (2019). Analytical errors in the determination of inorganic and organic phosphorus in waters based on laboratory experiences. Journal of Water Resource and Protection, 11(1), 53-67. doi: 10.4236/ jwarp.2019.111004.

[36] Zhao, M., Luo, J., Zhou, Q., Yuan, Y., Shi, B., Zhu, T., Lu, J., Hu, X., Jiao, L., Sun, P., & Jin, M. (2021). Influence of dietary phosphorus on growth performance, phosphorus accumulation in tissue and energy metabolism of juvenile swimming crab (Portunus trituberculatus). Aquaculture Reports, 20, article number 100654. doi: 10.1016/j. aqrep.2021.100654.

Hrynevych, N., Svitelskyi, M., Khomiak, O., Ishchuk, О., & Matkovska, S. (2023). Influence of various phosphoric concentrations on tissue and intracellular metabolism of Cyprinus Carpio L. in aquatic habitat. Scientific Horizons, 26(5), 21-36. https://doi.org/10.48077/scihor5.2023.21