Обґрунтування профілактики маститу корів в сухостійний період та після отелення
Анотація
Дослідження корів на мастит перед запуском та обробкою всіх дійок протимікробним засобом тривалої дії є важливим компонентом профілактичної підготовки тварин до сухостійного періоду. Крім того, визначення чутливості ізольованих в господарстві патогенів та проведення ротації антимікробних засобів збільшує ефективність терапії та зменшує ризик виникнення резистентних штамів мікроорганізмів. Метою цього дослідження було визначення профілактичного та терапевтичного ефекту засобів на основі повідонйоду та цефквіну сульфату для корів, хворих на мастит. У роботі були використані наступні методи: підрахунок загальної кількості соматичних клітин методом проточної цитометрії; каліфорнійський тест; чутливість до протимікробних засобів методом дисків на агарі; клінічний та фізіологічний метод; статистичний метод. Під час дослідження корів на мастит було встановлено, що у контрольній групі кількість соматичних клітин в середньому склала 450 тис/см3, загальна кількість мікроорганізмів – 130 тис. У корів дослідної групи продуктивність становила 23,6 %, кількість соматичних клітин – 600 тис/см3, мікроорганізмів – 550 тис. КУО/см3. Встановлено, що виділена мікрофлора проявляла високу чутливість до засобу на основі повідон-йоду та цефквіну сульфату. Тому консервацію вимені коровам дослідної групи з ознаками маститу проводили засобом на основі повідон-йоду, що вплинуло на збільшення лактації та покращення якості молока після отелення. Критерії молока в дослідній групі по завершенню експерименту відповідали ґатунку «екстра» – 30 %, «вищий» – 60 %, «перший» – 10 %. В результаті проведеної терапії у корів покращилася лактація, і якість молока відповідала ґатунку «перший». По завершенню дослідження у корів контрольної групи якість молока відповідала ґатунку «екстра» – 10 %, «вищий» – 40 %, «перший» – 50 %. Практична цінність дослідження полягає у профілактиці маститу у господарстві, поліпшенні якості отриманої продукції, зменшенні витрат на ветеринарне обслуговування та вибракування тварин
Ключові слова
запалення молочної залози; молочна продуктивність; дійкові канали; збудники маститу; соматичні клітини
[1] Bhutto, A.L., Murray, R.D., & Woldehiwet, Z. (2012). California mastitis test scores as indicators of subclinical intra-mammary infections at the end of lactation in dairy cows. Research in Veterinary Science, 92(1), 1-17. doi: 10.1016/j.rvsc.2010.10.006.
[2] Blanchet, F., Rault, L., Peton, V., Le Loir, Y., Blondeau, C., Lenoir, L., Dubourdeaux, M., & Even, S. (2021). Heat inactivation partially preserved barrier and immunomodulatory effects of Lactobacillus gasseri LA806 in an in vitro model of bovine mastitis. Beneficial Microbes, 12(1), 95-106. doi: 10.3920/BM2020.0146.
[3] Cheng, Z., Meng, Z., Tan, D., Datsomor, O., Zhan, K., Lin, M., & Zhao, G. (2022). Effects of supplementation of sodium acetate on rumen fermentation and microbiota in postpartum dairy cows. Frontiers in Microbiology, 13, article number 1053503. doi: 10.3389/fmicb.2022.1053503.
[4] DSTU 3662:2018. (2018). Raw cow’s milk. Specifications. Retrieved from http://online.budstandart.com/ua/ catalog/doc-page.html?id_doc=77350.
[5] DSTU 7357:2013. (2013). Milk and dairy products. Methods of microbiological control. Retrieved from http://online.budstandart.com/ua/catalog/doc-page?id_doc=84675.
[6] European convention for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes. (1986). Retrieved from https://rm.coe.int/168007a67b.
[7] Fotina, T., Fotina, H., Ladyka, V., Ladyka, L., & Zazharska, N. (2018). Monitoring research of somatic cells count in goat milk in the eastern region of Ukraine. Journal of the Hellenic Veterinary Medical Society, 69(3), 1101-1108. doi: 10.12681/jhvms.18882.
[8] Garch, F., Youala, M., Simjee, S., Moyaert, H., Klee, R., Truszkowska, B., Rose, M., Hocquet, D., Valot, B., Morrissey, I., de Jong, A., & VetPath Study Group (2020). Antimicrobial susceptibility of nine udder pathogens recovered from bovine clinical mastitis milk in Europe 2015-2016: VetPath results. Veterinary Microbiology, 245, article number 108644. doi: 10.1016/j.vetmic.2020.108644.
[9] Garkavenko, T.O., Gorbatyuk, O.I., Kozytska, T.G., Anriashchuk, V.O., Garkavenko, V.M., Dybkova, S.M., & Azirkina, I.M. (2021). Methodical recommendations for determining the sensitivity of microorganisms to antibacterial drugs. Kyiv: DNDILVSE.
[10] Hartung, T. (2010). Comparative analysis of the revised Directive 2010/63/EU for the protection of laboratory animals with its predecessor 86/609/EEC – a t4 report. Altex – Alternatives to Animal Experimentation, 27(4), 285-303. doi: 10.14573/altex.2010.4.285.
[11] Hasan, M.S., Kober, A.K.M.H., Rana, E.A., & Bari, M.S. (2022). Association of udder lesions with subclinical mastitis in dairy cows of Chattogram, Bangladesh. Advances in Animal and Veterinary Sciences, 10(2), 226-235. doi: 10.17582/journal.aavs/2022/10.2.226.235.
[12] Holko, I., Tančin, V., Vršková, M., & Tvarožková, K. (2019). Prevalence and antimicrobial susceptibility of udder pathogens isolated from dairy cows in Slovakia. The Journal of Dairy Research, 86(4), 436-439. doi: 10.1017/ S0022029919000694.
[13] ISO/IEC 17025:2005. (2006). Retrieved from http://online.budstandart.com/ua/catalog/doc-page.html?id_doc=50873.
[14] Karpun, Ye., Parchenko, V., Fotina, T., Demianenko, D., Fotin, A., Nahornyi, V., & Nahorna, N. (2021). The investigation of antimicrobial activity of some s-substituted bis-1,2,4-triazole-3-thiones. Pharmacia, 68(4), 797-804. doi: 10.3897/pharmacia.68.e65761.
[15] Kober, A.K.M.H., Saha, S., Islam, M. A., Rajoka, M.S.R., Fukuyama, K., Aso, H., Villena, J., & Kitazawa, H. (2022). Immunomodulatory effects of probiotics: A novel preventive approach for the control of bovine mastitis. Microorganisms, 10(11), article number 2255. doi: 10.3390/microorganisms10112255.
[16] Kovačević, Z., Mihajlović, J., Mugoša, S., Horvat, O., Tomanić, D., Kladar, N., & Samardžija, M. (2022). Pharmacoeconomic analysis of the different therapeutic approaches in control of bovine mastitis: Phytotherapy and antimicrobial treatment. Antibiotics, 12(1), article number 11. doi: 10.3390/antibiotics12010011.
[17] Law of Ukraine No. 249 “On the Procedure for Carrying out Experiments and Experiments on Animals by Scientific Institutions”. (2012, March). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/z0416-12#Text.
[18] Müller, S., Nitz, J., Tellen, A., Klocke, D., & Krömker, V. (2023). Effect of antibiotic compared to non-antibiotic dry cow treatment on the bacteriological cure of intramammary infections during the dry period-a retrospective cross-sectional study. Antibiotics, 12(3), article number 429. doi: 10.3390/antibiotics12030429.
[19] Muturi, E.W. (2020). Effect of mastitis on milk production in dairy cows in Kenya. Journal of Animal Health, 2(1), 85-91. doi: 10.47604/jah.1170.
[20] Ndahetuye, J.B., Twambazimana, J., Nyman, A.K., Karege, C., Tukei, M., Ongol, M.P., Persson, Y., & Båge, R. (2020). A cross sectional study of prevalence and risk factors associated with subclinical mastitis and intramammary infections, in dairy herds linked to milk collection centers in Rwanda. Preventive Veterinary Medicine, 179, article number 105007. doi: 10.1016/j.prevetmed.2020.105007.
[21] Neculai-Valeanu, A.S., & Ariton, A.M. (2022). Udder health monitoring for prevention of bovine mastitis and improvement of milk quality. Bioengineering, 9(11), article number 608. doi: 10.3390/bioengineering9110608.
[22] Paliy, A., Aliiev, E., Nanka, A., Bogomolov, O., Bredixin, V., Paliy, A., Shkromada, O., Musiienko, Y., Stockiy, A., & Grebenik, N. (2021). Identifying changes in the technical parameters of milking rubber under industrial conditions to elucidate their effect on the milking process. Eastern-European Journal of Enterprise Technologies, 3(1(111), 21-29. doi: 10.15587/1729-4061.2021.231917.
[23] Paliy, A., Aliiev, E., Paliy, A., Ishchenko, K., Shkromada, O., Musiienko, Y., Plyuta, L., Chekan, O., Dubin, R., & Mohutova, V. (2021). Development of a device for cleansing cow udder teats and testing it under industrial conditions. Eastern-European Journal of Enterprise Technologies, 1(1(109)), 43-53. doi: 10.15587/17294061.2021.224927.
[24] Ruegg, P.L. (2017). A 100-Year Review: Mastitis detection, management, and prevention. Journal of dairy science, 100(12), 10381-10397. doi: 10.3168/jds.2017-13023.
[25] Saed, H.A.E.R., & Ibrahim, H.M.M. (2020). Antimicrobial profile of multidrug-resistant Streptococcus spp. isolated from dairy cows with clinical mastitis. Journal of Advanced Veterinary and Animal Research, 7(2), 186197. doi: 10.5455/javar.2020.g409.
[26] Sharun, K., Dhama, K., Tiwari, R., Gugjoo, M.B., Iqbal Yatoo, M., Patel, S.K., Pathak, M., Karthik, K., Khurana, S.K., Singh, R., Puvvala, B., Amarpal, Singh, R., Singh, K.P., & Chaicumpa, W. (2021). Advances in therapeutic and managemental approaches of bovine mastitis: A comprehensive review. The Veterinary Quarterly, 41(1), 107136. doi: 10.1080/01652176.2021.1882713.
[27] Shkromada, O., Pikhtirova, A., Tytukh, Ya., Baydevliatov, Yu., & Fotin, A. (2022). Treatment of subclinical mastitis of cows with probiotics. Scientific Horizons, 25(1), 30-40. doi: 10.48077/scihor.25(1).2022.30-40.
[28] Shkromada, O., Skliar, O., Pikhtirova, A., & Gerun, I. (2019). Pathogens transmission and cytological composition of cow’s milk. Acta Vet Eurasia, 45, 73-79. doi: 10.26650/actavet.2019.19004.
[29] Tomanić, D., Kladar, N., Radinović, M., Stančić, I., Erdeljan, M., Stanojević, J., Galić, I., Bijelić, K., & Kovačević, Z. (2023). Intramammary ethno-veterinary formulation in bovine mastitis treatment for optimization of antibiotic use. Pathogens, 12(2), article number 259. doi: 10.3390/pathogens12020259.
[30] Wang, L., Zhao, X., Xia, X., Zhu, C., Qin, W., Xu, Y., Hang, B., Sun, Y., Chen, S., Zhang, H., Jiang, J., Hu, J., Fotina, H., & Zhang, G. (2019). Antimicrobial peptide JH-3 effectively kills salmonella enterica serovar typhimurium strain CVCC541 and reduces its pathogenicity in mice. Probiotics and Antimicrobial Proteins, 11(4), 1379-1390. doi: 10.1007/s12602-019-09533-w.
[31] Wang, Y., Jiang, J., Fotina, H., Zhang, H., & Chen, J. (2020). Advances in antibody preparation techniques for immunoassays of total aflatoxin in food. Molecules, 25(18), article number 4113. doi: 10.3390/ molecules25184113.
[32] Xu, P., Fotina, H., Fotina, T., & Wang, S. (2021). In vitro culture and evaluation of bovine mammary epithelial cells from Ukraine dairy cows. Iranian Journal of Veterinary Research, 22(1), 65-71. doi: 10.22099/ijvr.2020.37714.5508.
[33] Xu, P., Xu, X.B., Khan, A., Fotina, T., & Wang, S.H. (2021). Antibiofilm activity against Staphylococcus aureus and content analysis of Taraxacum Officinale phenolic extract. Polish Journal of Veterinary Sciences, 24(2), 243-251. doi: 10.24425/pjvs.2021.137659.
[34] Zhao, C., Bai, Y., Fu, S., Wu, L., Xia, C., & Xu, C. (2020). Metabolic alterations in dairy cows with subclinical ketosis after treatment with carboxymethyl chitosan-loaded, reduced glutathione nanoparticles. Journal of Veterinary Internal Medicine, 34(6), 2787-2799. doi: 10.1111/jvim.15894.
[35] Zhu, C., Zhao, Y., Zhao, X., Liu, S., Xia, X., Zhang, S., Wang, Y., Zhang, H., Xu, Y., Chen, S., Jiang, J., Wu, Y., Wu, X., Zhang, G., Bai, Y., Hu, J., Fotina, H., Wang, L., & Zhang, X. (2022). The antimicrobial peptide MPX can kill staphylococcus aureus, reduce biofilm formation, and effectively treat bacterial skin infections in mice. Frontiers in Veterinary Science, 9, article number 819921. doi: 10.3389/fvets.2022.819921.
[36] Zigo, F., Vasil’, M., Ondrašovičová, S., Výrostková, J., Bujok, J., & Pecka-Kielb, E. (2021). Maintaining optimal mammary gland health and prevention of mastitis. Frontiers in Veterinary Science, 8, article number 607311. doi: 10.3389/fvets.2021.607311.