Дослідження ембріонального періоду розвитку ікри самок раків різних видів
Анотація
Вирощування прісноводних раків є перспективним напрямом виробництва на ринку продуктів харчування. Наразі ця галузь аквакультури набуває популярності у всьому світі, однак, з урахуванням великого споживацького попиту, потребує модернізації виробництва. Ефективність виробництва гідробіонтів ґрунтується на впровадженні у виробничі процеси інноваційних методів, в основу яких покладено знання про біологічні особливості, в тому числі про відтворювальну здатність та ембріональний період розвитку ікри. Саме тому метою роботи було дослідження самок за відтворною якістю, визначення інкубаційного періоду ікри, її кількості, ваги, виживаності. У статті подано результати досліджень щодо відтворних якостей та ембріонального періоду розвитку ікри самок раків чотирьох видів (Cherax quadricarinatus, Procambarus clarkii, Procambarus fallax forma virginalis, Cherax destructor), які утримувались в окремих резервуарах замкнутого водопостачання за оптимальної щільності посадки 4 особини на 0,45 м2 . Дослідження показали, що кольорова гамма ікри та тривалість інкубаційного періоду її дозрівання є неоднаковою у різних видів раків. Так, перша стадія інкубації була найкоротшою і перебувала в межах 2,80 (флоридський рак) та 3,55 (рак деструктор) доби, друга тривала найдовше – від 13,17 до 15,80 діб у австралійського і широкопалого рака відповідно. Згідно аналізу фізіологічних особливостей мікропопуляції самок раків нами проведено їх поділ за категоріями якості з врахуванням таких показників – маса самок, маса ікри, сумарна кількість ікринок, кількість ікринок на 1 г самки. Самки австралійського червоноклешневого рака відмінної категорії були найкращими серед усіх видів за показниками живої маси (63,0±0,67 г), маси ікри (5,0±0,05 г) та сумарної кількості ікринок (376,8±16,34 шт.), найнижчими аналогічні показники були у мармурового виду (16,8±0,15 г, 1,6±0,03 г, 124,5±2,66 шт.) відповідно. За показником кількості ікринок на 1 г маси самки переважали раки флоридського виду (7,8±0,19). Натомість рак деструктор мав проміжні результати за цими характеристиками. Результати дослідження можуть бути використані у господарській діяльності підприємств з виробництва гідробіонтів
Ключові слова
Cherax quadricarinatus; Procambarus clarkii; Procambarus fallax forma virginali; Cherax destructor; відтворні якості самок
[1] Amer, M.A., El-Sayed, A.A.M., Zaakouk, S.A., Al-Damhougy, K.A., & Ghanem, M.H. (2015). Egg incubation and post-embryonic development in the red swamp crayfish Procambarus clarkii from the River Nile, Egypt. International Journal of Advanced Research, 3(8), 281-289.
[2] Asher, A. (2020). Converging innovative technologies in intensive production of redclaw crayfish seedstock. Hatchery Feed & Management, 8, 12-15.
[3] Aydin, H., & Dilek, M.K. (2004). Effects of different water temperatures on the hatching time and survival rates of the freshwater crayfish astacus leptodactylus (esch., 1823) eggs. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 4, 75-79.
[4] Bitomsky, J. (2008). Scoping report red claw industry development. Cairns: Kleinhardt Business Consultants.
[5] European convention for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes. (1986). Retrieved from https://rm.coe.int/168007a67b.
[6] FAO. (2021). FAO Yearbook. Fishery and Aquaculture Statistics. Rome: FAO. doi: 10.4060/cb7874t.
[7] Fedorovych, E.I., Muzhenko, A.V., & Slyusar, M.V. (2022a). Weight growth and preservation of crayfish of different species depending on their planting density. Breeding and Genetics of Animals, 63, 136-142. doi: 10.31073/abg.63.11.
[8] Fedorovych, Y.I., Muzhenko, A.V., & Sliusar, M.V. (2022b). Between chemical and physical indicators of water with morphological signs of cancer of different species. Bulletin of Sumy National Agrarian University. The Series: Livestock, 4(47), 165-170. doi: 10.32845/bsnau.lvst.2021.4.28.
[9] Hrynevych, N.E., Zharchynska, V.S., Svitelskyi, M.M., Khomyak, O.A., & Slyusarenko, A.O. (2022). A promising object of aquaculture of crustaceans Cherax quadricarinatus (vonmartes, 1868): Biology, technology (review). Aquatic Bioresources and Aquaculture, 1, 47-62. doi: 10.32851/wba.2022.1.4.
[10] ISO/IEC 17025:2005. (2006). Retrieved from http://online.budstandart.com/ua/catalog/doc-page.html?id_ doc=50873.
[11] Jones, C.M. (1990). The biology and aquaculture potential of the tropical freshwater crayfish Cherax quadricarinatus. Retrieved from https://researchonline.jcu.edu.au/31548/.
[12] Jones, C.M. (1998). Redclaw crayfish. Rural Industries Research and Development Corporation, 127-123.
[13] Jones, J.P.G, Rasamy, J.R., Harvey, A., Toon, A., Oidtmann, B., Randrianarison, M.H., Raminosoa, N., & Ravoahangimalala, O.R. (2009). The perfect invader: A parthenogenic crayfish poses a new threat to Madagascar’s freshwater biodiversity. Biological Invasions, 11(6), 1475-1482. doi: 10.1007/s10530-008-9334-y.
[14] José, N.-P., Luis, R.M.-C., Mayra, V.-M., & Humberto, V. (2019). Aeration level in HDPE-lined nursery ponds that optimizes yield and production cost of preadult redclaw crayfish, Cherax quadricarinatus. Aquacultural Engineering, 96, article number 102221. doi: 10.1016/j.aquaeng.2021.102221.
[15] King, C.R. (1993). Egg development time and storage for red claw crayfish. Aquaculture, 109 (3-4), 275-280. doi: 10.1016/0044-8486(93)90169-Y.
[16] Koca, S.B., Yigit, N.O., & Eralp. H. (2013). Embryonic and postembryonic development of freshwater crayfish astacus leptodactylus (Eschscholtz, 1823). Egirdir Su Urunleri Fakultesi Dergisi, 9(1), 21-30.
[17] Law of Ukraine No. 249 “On the Procedure for Carrying out Experiments and Experiments on Animals by Scientific Institutions”. (2012, March). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/z0416-12#Text.
[18] Liu, F., Qu, Y.-K, Geng C, Wang, A.-M., Zhang, J.-H., Li, J.-F., Chen, K.-J., Liu, B. Tian, H.-Y., Yang, W.-P., & Yu, Y.-B. (2020). Analysis of the population structure and genetic diversity of the red swamp crayfish (Procambarus clarkii) in China using SSR markers. Electronic Journal of Biotechnology, 47, 59-71. doi: 10.1016/j.ejbt.2020.06.007.
[19] Lodge, D.V., et al. (2012). Global introductions of Cray fishes: Evaluating the impact of species invasions on ecosystem services. Annual Review of Ecology, Evolution and Systematics, 43, 449-472. doi: 10.1146/annurevecolsys-111511-103919.
[20] Masser, M.P., & Rouse, D.B. (1997). Australian red claw crayfish. Southern Regional Aquaculture Center, 244, 1-8.
[21] Medley, P.B., Rouse, D.B., & Brady, Y.J. (1993). Interactions and disease relationships between Australian red claw crayfish (Cherax quadricarinatus) and red swamp crayfish (Procambarus clarkii) in communal culture ponds. Freshwater Crayfish, 9(1), 50-56. doi: 10.5869/fc.1993.v9.050.
[22] Norshida, I., Mohd Nasir, M.S.A., Khaleel, A.G., Sallehuddin, A.S., SyedIdrus, S.N., Istiqomah, I., Venmathi, M.B.A., & Ahmad, S.K. (2021). First wildrecord of Australian red-claw crayfish Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) in the East Coast of Peninsular Malaysia. Bio Invasions Records, 10(2), 360-368. doi: 10.3391/bir.2021.10.2.14.
[23] Patoka, J., Buřič, M., Kolář, V., Bláha, M., Petrtý, l. M., Franta, P., Tropek, R., Kalous, L., Petrusek, A., & Kouba, A. (2016). Predictions of marbled crayfish establishment in conurbations fulfilled: Evidences from the Czech Republic. Biologia, 71, 1380-1385. doi: 10.1515/biolog-2016-0164.
[24] Radzikhovsky, A. (2017). Fast Australian cancer. Retrieved from https://agrotimes.ua/article/shvidkijavstralijskij-rak/.
[25] Tsukerzis, Ya. (1989). River crayfish. Vilnius: Mokslas.
[26] Vogt, G., (2008). The marbled crayfish: A new model organism for research on development, epigenetics and evolutionary biology. Journal of Zoology, 276(1), 1-13. doi: 10.1111/j.1469-7998.2008.00473.x