Респіраторна форма інфекційного ринотрахеїту: аналіз імуноморфологічних реакцій
Анотація
Концентрація худоби на обмежених територіях, порушення режиму харчування, дисбаланс мікрота макроелементів сприяють пригніченню природної резистентності організму, недостатньому набору живої маси тварини, що призводить до зростання інфекційних захворювань молодняка з високими показниками вимушеного забою та падежу худоби. Джерело збудника інфекції ринотрахеїту – герпевірус великої рогатої худоби Bovine alphaherpesvirus 1 – перешкоджає розвитку тваринницької галузі, тому необхідно шукати можливі підходи щодо профілактики та контролю даної інфекції. Метою дослідження є визначення імуноморфологічних змін у лімфоїдній тканині трахеї та бронхіальної системи, у регіонарних лімфатичних вузлах легень і в селезінці в телят, які природно хворі на інфекційний ринотрахеїт. В основу експериментальних досліджень покладено вивчення імуноморфологічних реакцій у лімфоїдній тканині під час інфікування молодняка великої рогатої худоби вірусом Bovine alphaherpesvirus 1, із застосуванням полімеразної ланцюгової реакції, гістологічних та імуногістохімічних методів. За результатами досліджень встановлено, що в трахеї спостерігалася гіперплазія трахеє-асоційованої лімфоїдної тканини, а в легенях – гіперплазія бронхіально-асоційованої лімфоїдної тканини, при цьому уражені ділянки трахеї та легень були інфільтровані лімфоцитами, макрофагами та плазматичними клітинами. В імуноморфологічних реакціях реґіонарних лімфатичних вузлів відзначають гіперплазію В- і Т-залежних зон, а в селезінці – гіперплазію Т-залежних зон білої пульпи. Таким чином, імунокомпетентні клітини лімфоїдної тканини, асоційовані з В- і Т-залежними ділянками трахеї, бронхіальної системи легень і реґіонарних лімфатичних вузлів легень, а також з Т-залежними ділянками селезінки, беруть безпосередню участь у патогенезі інфекційного ринотрахеїту телят респіраторного типу. Антибактеріальна терапія антибіотиками знищує патогенну та нормальну флору в кишечнику, але недостатньо ефективно діють на вірусну інфекцію, тому виробничі випробування ефективних засобів специфічної профілактики та вакцинації є першочерговим завданням ветеринарії
Ключові слова
велика рогата худоба; герпевірус; полімеразна ланцюгова реакція; патологія; імуноморфологія; асоціативні хвороби
[1] Aniţă, D., Aniţă, A., & Savuţă, G. (2010). Detection of bovine herpesvirus type 1 by PCR assay. Bulletin of the University of Agricultural Sciences & Veterinary Medicine Cluj-Napoca. Veterinary Medicine, 67(2), 23-27. doi: 10.15835/buasvmcn-vm:67:2:5915.
[2] Atambekova, Zh., Kamarli, A., Berdikulov, A., Jetigenov, E., Nurgaziev, R., Orozov, J., Believe, A., Davaajav, O., Muthoni Mumbi, N.N., Guswanto, A., Sivakumar, T., & Yokoyama, N. (2023). An epidemiological survey of vector-borne pathogens infecting cattle in Kyrgyzstan. Parasitology International, 97, article number 102791. doi: 10.1016/j.parint.2023.102791.
[3] Baruch, J., Cernicchiaro, N., Cull, C.A., Lechtenberg, K.F., Nickell, J.S., & Renter, D.G. (2019). Performance of multiple diagnostic methods in assessing the progression of bovine respiratory disease in calves challenged with infectious bovine rhinotracheitis virus and Mannheimia haemolytica. Journal of Animal Science, 97(6), 2357-2367. doi: 10.1093/jas/skz107.
[4] Beristain-Covarrubias, N., Perez-Toledo, M., Thomas, M.R., Henderson, I.R., Watson, S.P., & Cunningham, A.F. (2019). Understanding infection-induced thrombosis: Lessons learned from animal models. Frontiers in Immunology, 10, article number 2569. doi: 10.3389/fimmu.2019.02569.
[5] Comakli, S., Sağlam, Y.S., & Timurkan, M.Ö. (2019). Comparative detection of bovine herpesvirus-1 using antigen ELISA, immunohistochemistry and immunofluorescence methods in cattle with pneumonia. Turkish Journal of Veterinary & Animal Sciences, 43(3), 306-313. doi: 10.3906/vet-1812-85.
[6] Compton, S.R. (2020). PCR and RT-PCR in the diagnosis of laboratory animal infections and in health monitoring. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science, 59(5), 458-468. doi: 10.30802/ AALAS-JAALAS-20-000008.
[7] Counotte, M.J., Minbaeva, G., Usubalieva, J., Abdykerimov, K., & Torgerson, P.R. (2016). The burden of Zoonoses in Kyrgyzstan: A systematic review. PLOS Neglected Tropical Diseases, 10(7), article number e0004831. doi: 10.1371/journal.pntd.0004831.
[8] Duca, G., Bor, P.-A., Rusu, M., Șandru, C.D., Olah, D., Spînu, M., Páll, E., Cerbu, C., Potârniche, A., & Vasiu, A. (2022). Health impacts and control measures in infectious bovine rhinotracheitis – A review. Scientific Works. Series C, Veterinary Medicine, LXVIII(2), 68-77.
[9] EFSA AHAW Panel (EFSA Panel on Animal Health and Welfare), et al. (2017a). Assessment of listing and categorisation of animal diseases within the framework of the Animal Health Law (Regulation (EU) No 2016/429): Infectious bovine rhinotracheitis (IBR). EFSA Journal, 15(7), article number e04947. doi: 10.2903/j. efsa.2017.4947.
[10] EFSA AHAW Panel (EFSA Panel on Animal Health and Welfare), et al. (2017b). Ad hoc method for the assessment on listing and categorisation of animal diseases within the framework of the Animal Health Law. EFSA Journal, 15(7), article number e04783. doi: 10.2903/j.efsa.2017.4783.
[11] Erdem, A.E., & Sareyyüpoğlu, B. (2022). DIVA (Differentiating Infected from Vaccinated Animals) vaccines and strategies. Journal of Etlik Veterinary Microbiology, 33(1), 102-109. doi: 10.35864/evmd.932993.
[12] European convention for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes. (1986). Retrieved from https://rm.coe.int/168007a67b.
[13] Evans, C.A., Woolford, L., Hemmatzadeh, F., Reichel, M.P., & Cockcroft, P.D. (2021). Pathological lesions of lambs infected in utero with bovine viral diarrhoea virus type 1c (BVDV-1c). Veterinary Record, 188(3), article number e6. doi: 10.1002/vetr.6.
[14] Faverjon, C., Carmo, L.P., & Berezowski, J. (2019). Multivariate syndromic surveillance for cattle diseases: Epidemic simulation and algorithm performance evaluation. Preventive Veterinary Medicine, 172, article number 104778. doi: 10.1016/j.prevetmed.2019.104778.
[15] Garcia, L.F., Rodrigues, E.S.B., de Souza, G.R.L., Wastowski, I.J., de Oliveira, F.M., dos Santos, W.T., & de Souza Gil, E. (2020). Impedimetric biosensor for bovine herpesvirus type 1-antigen detection. Electroanalysis, 32(5), 1100-1106. doi: 10.1002/elan.201900606.
[16] Hernandez-Medrano, J.H., Espinosa-Castillo, L.F., Rodriguez, A.D., Gutierrez, C.G., & Wapenaar, W. (2021). Use of pooled serum samples to assess herd disease status using commercially available ELISAs. Tropical Animal Health and Production, 53(5), article number 507. doi: 10.1007/s11250-021-02939-1.
[17] Hodnik, J.J., et al. (2021). Overview of cattle diseases listed under category C, D or E in the Animal Health Law for which control programmes are in place within Europe. Frontiers in Veterinary Science, 8, article number 688078. doi: 10.3389/fvets.2021.688078.
[18] Iscaro, C., Cambiotti, V., Petrini, S., & Feliziani, F. (2021). Control programs for infectious bovine rhinotracheitis (IBR) in European countries: An overview. Animal Health Research Reviews, 22(2), 136-146. doi: 10.1017/ S1466252321000116.
[19] Istituto Superiore di Sanità. (2021). The European Union Reference Laboratory (EURL) for Escherichia coli, including Shiga toxin-producing E. coli (STEC). Retrieved from https://www.iss.it/zoonosi/-/asset_publisher/ QoudT1Q6UMDZ/content/the-european-union-reference-laboratory-eurl-for-escherichia-coli-includingshiga-toxin-producing-e.-coli-stec-.
[20] Kydyshov, K., Usenbaev, N., Sharshenbekov, A., Aitkuluev, N., Abdyraev, M., Chegirov, S., Kazybaeva, J., Brangsch, H., Melzer, F., Neubauer, H., & Pletz, M.W. (2022). Brucellosis in humans and animals in Kyrgyzstan. Microorganisms, 10(7), article number 1293. doi: 10.3390/microorganisms10071293.
[21] Mandelik, R., Bires, J., Ozsvari, L., Hodnik, J.J., & Vilcek, S. (2021). Infectious bovine rhinotracheitis control program in Slovakia. Frontiers in Veterinary Science, 8, article number 675521. doi: 10.3389/fvets.2021.675521.
[22] Mars, K.J., Raimbekov, D.R., & Djetigenov, E.A. (2019). Economic damage from dangerous infectious diseases of farm animals in the Kyrgyz Republic. Bulletin of the Kyrgyz National Agrarian University named after K.I. Skryabin, 2, 80-86.
[23] Martucciello, A., Balestrieri, A., Righi, C., Cappelli, G., Scoccia, E., Grassi, C., Brandi, S., Rossi, E., Galiero, G., Gioia, D., Fusco, G., Feliziani, F., De Carlo, E., & Petrini, S. (2023). Evaluation of an immunization protocol using Bovine alphaherpesvirus 1 gE-deleted marker vaccines against Bubaline alphaherpesvirus 1 in water buffaloes. Vaccines, 11(5), article number 891. doi: 10.3390/vaccines11050891.
[24] McDaneld, T.G., Workman, A.M., Chitko-McKown, C.G., Kuehn, L.A., Dickey, A., & Bennett, G.L. (2022). Detection of Mycoplasma bovirhinis and bovine coronavirus in an outbreak of bovine respiratory disease in nursing beef calves. Frontiers in Microbiomes, 1, article number 1051241. doi: 10.3389/frmbi.2022.1051241.
[25] Mottaghian, P., Raoofi, A., Madadgar, O., Badiei, A., & Tamai, I.A. (2022). A study on mycoplasmal and viral infections in Bovine Keratoconjunctivitis. Iranian Journal of Veterinary Medicine, 17(3), 345-352. doi: 10.32598/ IJVM.17.4.1005282.
[26] Nandi, S., Kumar, M., Manohar, M., & Chauhan, R.S. (2009). Bovine herpes virus infections in cattle. Animal Health Research Reviews, 10(1), 85-98. doi: 10.1017/S1466252309990028.
[27] Newcomer, B.W. (2021). Infectious agents: Infectious Bovine rhinotracheitis. In Bovine Reproduction (pp. 753757). Hoboken: John Wiley & Sons. doi: 10.1002/9781119602484.ch61.
[28] Righi, C., Franzoni, G., Feliziani, F., Jones, C., & Petrini, S. (2023). The cell-mediated immune response against Bovine alphaherpesvirus 1 (BoHV-1) infection and vaccination. Vaccines, 11(4), article number 785. doi: 10.3390/ vaccines11040785.
[29] Rosete Fernández, J.V., Socci Escatell, G.A., Fragoso Islas, A., Olazarán Jenkins, S., & Ríos Utrera, Á. (2023). Production of serum antibodies in response to vaccination against infectious bovine rhinotracheitis and bovine viral diarrhea viruses with a commercial vaccine. Revista Mexicana de Ciencias Pecuarias, 14(2), 260-276. doi: 10.22319/rmcp.v14i2.5657.
[30] Snyder, E.R., Credille, B.C., & Heins, B.D. (2019). Systematic review and meta-analysis comparing arrival versus delayed vaccination of high-risk beef cattle with 5-way modified-live viral vaccines against BHV-1, BRSV, PI3, and BVD types 1 and 2. The Bovine Practitioner, 53(1), 1-7. doi: 10.21423/bovine-vol53no1p1-7.
[31] Wang, J., O’Keefe, J., Orr, D., Loth, L., Banks, M., Wakeley, P., West, D., Card, R., Ibata, G., van Maanen, K., Thoren, P., Isaksson, M., & Kerkhofs, P. (2007). Validation of a real-time PCR assay for the detection of bovine herpesvirus 1 in bovine semen. Journal of Virological Methods, 144(1-2), 103-108. doi: 10.1016/j.jviromet.2007.04.002.
[32] World Organisation for Animal Health. (2017). Infectious bovine rhinotracheitis/infectious pustular vulvovaginitis. Retrieved from https://www.woah.org/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahc/current/chapitre_ibr_ipv.pdf.