Взаємозв'язок рівня глобулінів у пізній сухостійний період з рівнем запліднення та вибуття корів протягом 90 діб після отелення
Анотація
Захворювання транзитного періоду у корів та їх вибуття після отелення привертають значну увагу. Тому рання діагностика та прогнозування патологічних процесів у перехідний період у корів із використанням біохімічних маркерів залишається актуальною. Метою роботи було визначити взаємозв’язок рівня глобулінів у пізній сухостійний період з біохімічними показниками та рівнем запліднення та вибуття корів протягом 90 діб після отелення. Було проведено дослідження сироватки крові корів основного стада за 10-15 діб до родів, на підставі чого умовно розділено тварин на три групи (з ознаками гіпогамаглобунемії (менше 30 г/л), а також з нормальним та підвищеним (понад 40 г/л) рівнем глобулінів. Крім показників білково-азотистого метаболізму, в сироватці крові також визначали ензиматичну активність та оцінювали стан вуглеводно-ліпідного, мінерального і вітамінного обмінів з використанням біохімічних, хроматографічних та спектрофотометричних методів досліджень. Було встановлено, що у корів з проявом гіпоглобулінемії спостерігалася суттєво нижча активність аспарагінової трансамінази, а також відмінності показників вуглеводно-ліпідного обміну (вищий рівень глюкози та знижена концентрація ліпопротеїдів високої щільності). Крім того, у цих корів було виявлено зниження вмісту магнію, а також міді. Досліджено, що впродовж 90 діб після отелення спостерігався найвищий рівень вибуття серед корів зі зниженим рівнем глобулінів, а найнижчий – у тварин з нормоглобулінемією. Отже, доведено безпосередній зв’язок між рівнем глобулінів у сироватці крові за 10−15 діб до отелення з репродуктивною здатністю та рівнем вибуття корів. Це дає змогу проводити ранню діагностику та прогнозування розвитку післяродової патології та порушення репродуктивної функції. Одержані результати можуть бути використані практичними фахівцями та науковцями для планування та вивчення ефективності профілактичних заходів з підвищення збереженості корів та їх відтворювальної здатності у післяотельний період
Ключові слова
сухостійний період, післяродова патологія, глобуліни, біохімічні показники, мінеральний обмін, репродуктивна здатність
[1] Alberghina, D., Giannetto, C., Vazzana, I., Ferrantelli, V., & Piccione, G. (2011). Reference intervals for total protein concentration, serum protein fractions, and albumin/globulin ratios in clinically healthy dairy cows. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 23(1), 111-114. doi: 10.1177/104063871102300119.
[2] Andjelić, B., Djoković, R., Cincović, M., Bogosavljević-Bošković, S., Petrović, M., Mladenović, J., & Čukić, A. (2022). Relationships between milk and blood biochemical parameters and metabolic status in dairy cows during lactation. Metabolites, 12(8), article number 733. doi: 10.3390/metabo12080733.
[3] Bertoni, G., Trevisi, E., Han X., Bionaz, M., & Bionaz, M. (2008). Effects of inflammatory conditions on liver activity in puerperium period and consequences for performance in dairy cows. Journal of Dairy Science, 91(9), 3300-3310. doi: 10.3168/jds.2008-0995.
[4] Brscic, M., Cozzi, G., Lora, I., Stefani, A.L., Contiero, B., Ravarotto, L., & Gottardo, F. (2015). Reference limits for blood analytes in Holstein late-pregnant heifers and dry cows: Effects of parity, days relative to calving, and season. Journal of Dairy Science, 98(11), 7886-7892. doi: 10.3168/jds.2015-9345.
[5] Cheong, S.H., Sá Filho, O.G., Absalon-Medina, V.A., Schneider, A., Butler, W.R., & Gilbert, R.O. (2017). Uterine and systemic inflammation influences ovarian follicular function in postpartum dairy cows. PloS One, 12(5), article number e0177356. doi: 10.1371/journal.pone.0177356.
[6] Conneely, M., Berry, D.P., Sayers, R., Murphy, J.P., Lorenz, I., Doherty, M.L., & Kennedy, E. (2013). Factors associated with the concentration of immunoglobulin G in the colostrum of dairy cows. Animal, 7(11), 1824-1832. doi: 10.1017/S1751731113001444.
[7] Diniso, Y.S., & Jaja, I.F. (2021). A retrospective survey of the factors responsible for culling and mortality in dairy farms in the Eastern Cape Province, South Africa. Scientific African, 12, article number e00838. doi: 10.1016/j.sciaf.2021.e00838.
[8] Djoković, R., Šamanc, H., Jovanović, M., Fratrić, N., Dosković, V., & Stanimirović, Z. (2013). Relationship among blood indicators of hepatic function and lipid content in the liver during transitional period in high-yielding dairy cows. Acta Scientiae Veterinariae, 41(1), 1-6.
[9] Elshahawy, I.I., & Abdullaziz, I.A. (2017). Hemato-biochemical profiling in relation to metabolic disorders in transition dairy cows. Alexandria Journal for Veterinary Sciences, 55(2), 25-33. doi: 10.5455/ajvs.275430.
[10] Grummer, R.R. (1995). Impact of changes in organic nutrient metabolism on feeding the transition dairy cow. Journal of Animal Science, 73, 2820-2833. doi: 10.2527/1995.7392820x.
[11] Ha, S., Kang, S., Han, M., Lee, J., Chung, H., Oh, S-I., Kim, S., & Park, J. (2022). Predicting ketosis during the transition period in Holstein Friesian cows using hematological and serum biochemical parameters on the calving date. Scientific Reports, 12(1), 1-9. doi: 10.1038/s41598-022-04893-w.
[12] Hailemariam, D., Mandal, R., Saleem, F., Dunn, S.M., Wishart, D.S., & Ametaj, B.N. (2010). Identification of predictive biomarkers of disease state in transition dairy cows. Journal of Dairy Science, 97, 2680-2693. doi: 10.3168/jds.2013-6803.
[13] Hernández, J., Muiño, R., Benedito, J.L., Abuelo, A., & Castillo, C. (2022). Redox status and oxidative stress in bovine. Large Animal Review, 28(3), 145-151.
[14] Ingvartsen, K.L. (2006). Feeding-and management-related diseases in the transition cow: Physiological adaptations around calving and strategies to reduce feeding-related diseases. Animal Feed Science and Technology, 126(3-4), 175-213. doi: 10.1016/j.anifeedsci.2005.08.003.
[15] Kahn, C.M., & Line, S. (Eds.) (2010). The Merck veterinary manual. New York: Merck & Co., Inc.
[16] Kaya, S., Merhan, O., Kacar, C., Colak, A., & Bozukluhan, K. (2016). Determination of ceruloplasmin, some other acute phase proteins, and biochemical parameters in cows with endometritis. Veterinary World, 9(10), article number 1056. doi: 10.14202/vetworld.2016.1056-1062.
[17] Kucuk Baykan, Z., & Özcan, M. (2019). Causes of culling and disease incidences at first production year of imported brown swiss and simmental cows from Austria. Kocatepe Veterinary Journal, 12(2), 178-184. doi: 10.30607/kvj.478070.
[18] Nobili, V., Siotto, М., Bedogni, G., Ravà, L., Pietrobattista, A., Panera, N., Alisi, A., & Squitti, R. (2013). Levels of serum ceruloplasmin associate with pediatric nonalcoholic fatty liver disease. Journal of Pediatric Gastroenterology and Nutrition, 56(4), 370-375. doi: 10.1097/MPG.0b013e31827aced4.
[19] Paiano, R.B., Birgel, D.B., Bonilla, J., & Birgel Junior, E.H. (2020). Alterations in biochemical profiles and reproduction performance in postpartum dairy cows with metritis. Reproduction in Domestic Animals, 55(11), 1599-1606. doi: 10.1016/j.rvsc.2021.01.015.
[20] Pinedo, P.J., De Vries, A., & Webb, D.W. (2010). Dynamics of culling risk with disposal codes reported by dairy herd improvement dairy herds. Journal of Dairy Science, 93, 2250-2261. doi: 10.3168/jds.2009-2572.
[21] Rowlands, G.J., Manston, R., Stark, A.J., Russell, A.M., Collis, K.A., & Collis, S.C. (1980). Changes in albumin, globulin, glucose and cholesterol concentrations in the blood of dairy cows in late pregnancy and early lactation and relationships with subsequent fertility. The Journal of Agricultural Science, 94(3), 517-527. doi: 10.1017/S0021859600028501.
[22] Sammad, A., Khan, M.Z., Abbas, Z., Hu, L., Ullah, Q., Wang, Y., Zhu, H., & Wang, Y. (2022). Major nutritional metabolic alterations influencing the reproductive system of postpartum dairy cows. Metabolites, 12(1), article number 60. doi: 10.3390/metabo12010060.
[23] Sattler, T., & Fürll, M. (2004). Creatine kinase and aspartate aminotransferase in cows as indicators for endometritis. Journal of Veterinary Medicine Series A, 51(3), 132-137. doi: 10.1111/j.1439-0442.2004.00612.x.
[24] Sewalem, A., Miglior, F., Kistemaker, G.J., Sullivan, P., & Van Doormaal, B.J. (2008). Relationship between reproduction traits and functional longevity in Canadian dairy cattle. Journal of Dairy Science, 91(4), 1660-1668. doi: 10.3168/jds.2007-0178.
[25] Spaans, O.K., Kuhn-Sherlock, B., Hickey, A., Crookenden, M.A., Heiser, A., Burke, C.R., Phyn, C.V.C., & Roche, J.R. (2022). Temporal profiles describing markers of inflammation and metabolism during the transition period of pasturebased, seasonal-calving dairy cows. Journal of Dairy Science, 105(3), 2669-2698. doi: 10.3168/jds.2021-20883.
[26] Stojic, P., Beskorovajni, R., Pantelic, V., Novakovic, Z., Kovacevic, S., & Stanojevic, D. (2013). Causes for culling first calving cows on farms with different levels of production. Biotechnology in Animal Husbandry, 29(2), 259-267. doi: 10.2298/BAH1302259S.
[27] Stravsky, Y., Boltyk, N., Sachuk, R., Serheyev, V., & Rushchynska, T. (2020). The content of total protein and protein fractions in cows during pregnancy and their diagnostic value. Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies, 22(99), 198-202. doi: 10.32718/nvlvet9930.
[28] Tothova, C., Nagy, O., & Kovac, G. (2016). Serum proteins and their diagnostic utility in veterinary medicine: A review. Veterinární Medicína, 61(9), 475-496. doi: 10.17221/19/2016-VETMED.
[29] Venjakob, P.L., Staufenbiel, R., Heuwieser, W., & Borchardt, S. (2021). Association between serum calcium dynamics around parturition and common postpartum diseases in dairy cows. Journal of Dairy Science, 104(2), 2243-2253. doi: 10.3168/jds.2019-17821.
[30] Wankhade, P.R., Manimaran, A., Kumaresan, A., Jeyakumar, S., Ramesha, K.P., Sejian, V., Rajendran, D., & Varghese, M.R. (2017). Metabolic and immunological changes in transition dairy cows. Veterinary World, 10(11), 1367-1377. doi: 10.14202/vetworld.2017.1367-1377.
[31] Warnick, G.R., & Albers, J.J. (1978). A comprehensive evaluation of the heparin-manganese precipitation procedure for estimating high density lipoprotein cholesterol. Journal of Lipid Research, 19, 65-76.
[32] Yazlik, M.O., Çolakoğlu, H.E., Kaya, U., Küplülü, Ş., & Vural, M.R. (2020). Does increased immune response at early postpartum period have a relationship with metabolic markers and subsequent fertility? Polish Journal of Veterinary Sciences, 23(1). 27-35. doi: 10.24425/pjvs.2020.132745.
[33] Yefimov, V., & Sofonova, D. (2014). Age dynamics of concentrations vitamins a and e in the serum of piglets during a rearing period. Science and Technology Bulletin of SRC for Biosafety and Environmental Control of AIC, 2(3), 46-50.
[34] Zhelavskyi, M.M., Kernychnyi, S.P., Mizyk, V.P., Dmytriv, O.Y., & Betlinska, T.V. (2020). The importance of metabolic processes and immune responses in the development of pathology of cows during pregnancy and postpartum periods. Ukrainian Journal of Veterinary and Agricultural Sciences, 3(2), 36-41. doi: 10.32718/ujvas3-2.06.