Особливості дисбалансу маси складових матково-вагінального слизу корів за шкодочинного впливу ендогенних факторів
Анотація
Постійно зростаюча шкодочинна дія ендо- (продукти запальних процесів тканин статевих органів) та екзогенних факторів (умови зовнішнього середовища) на організм жінок і тварин (корови) призводить до суттєвого зниження заплідненості яйцеклітин при паруванні та штучному осіменінні. Тому метою досліджень було виявлені зміни ознак фізичного стану (колір, консистенція, плинність, домішки тощо) та співвідношень (гомеостаз) маси Н2О, органічних (ОР) і неорганічних (НР) речовин матково-вагінального слизу (МВС) використати для оцінки їх шкодочинного впливу на рівень запліднюваності корів після їх першого осіменіння. Для досліджень застосували методи: окомірної оцінки фізичного стану свіжоотриманого слизу; гравіметричної оцінки особливостей змінених параметрів маси складових його сухого залишку (СЗ); математико-статистичного аналізу визначених показників. Визначені гравіметричним методом особливості дисбалансу маси (г, мг), її розподілу (%) та співвідношень (Іm:1, Іс:1) у системі типу «середовище – речовина» за шкодочинної дії ендогенних факторів (продукти запальних процесів) свідчать, що виділеним під час тічки секретам статевих органів властиві не лише зміни ознак, але і в ±2–4 рази інші ніж норма (контроль) показники маси складових. За таких обставин розподіл речовин у зразках СЗ дослідної групи виражено рядом, де маса ОР1˃НР˃ОР2, але контрольної – НР˃ОР1˃ОР2. Це означає, що виділені статевими органами корів продукти запальних процесів змінюють норму гомеостазу маси (розподілу складових) ОР і НР біологічної системи типу «середовище – речовина». Показники отриманих співвідношень маси між парами складових Н2О:СЗ; Н2О:ОР2, Н2О:ОР1, Н2О:НР (контроль – 63:1, 586:1, 231:1, 109:1; дослід – 42:1, 310:1, 87:1, 112:1), за винятком пари Н2О:НР (Р˂0,05), свідчать про наявність вірогідних змін гомеостазу ОР і НР у системі «Н2О – складові». Висока ймовірність (Р˂0,02; ˂0,001) виявлених змін властива системі «СЗ – складові», а саме: якщо середні показники співвідношень пар СЗ:ОР2; СЗ:ОР1; СЗ:НР зразків контрольної групи становлять 9:1, 4:1, 2:1, то дослідної – 7:1, 3:1, 2:1
Ключові слова
матково-вагінальний слиз корів, динаміка і дисбаланс гомеостазу маси органічних і неорганічних речовин
[1] Adnane, M., & Chapwanya, A. (2022). A review of the diversity of the genital tract micribiome and implications for fertility of cattle. Animals, 12, article number 460. doi: 10.3390/ani12040460.
[2] Armengol, R., & Fraile, L. (2015). Comparison of two treatment strategies for cows with metritisin high-risk lactating dairy cows. Theriogenology, 83(8), 1344-1351. doi: 10.1016/j.theriogenology.2015.01.024.
[3] Berre, M.L., Gerlach, J.Q., Loughrey, C., Creavin, A., Pluta, K., Gallagher, M., Carrington, S.D., Joshi, L., & Kilcoyne, M. (2021). Examination of oestrus-dependent alterations of bovine Cervico-vaginal Mucus glycosylation for potential as potium fertilization indicators. Molecular Omics, 17(2), 338-346. doi: 10.1039/D0MO00193G.
[4] Boby, J., Kumar, H., Gupta, H.P., Jan, M.H., Singh, S.K., & Patra, M.K. (2017). Endometritis increases pro-inflammatory citokines in folicular fluid and cervico-vaginal mucus in the buffalo cow. Animal Biotechnology, 28(3), 163-167. doi: 10.1080/10495398.2016.1244067.
[5] Brodzki, P., Kostro, K., Brodzki, A., Wawron, W., Marczuk, J., & Kurek, Ł. (2015). Inflammatory cytpkines and acute-phase proteins concentrations in the peripheral blood and uterus of cows that developed endometritis during early postpartum. Theriogenology, 84, 11-18. doi: 10.1016/j.theriogenology.2015.02.006.
[6] Bugrov, A.D. (2013). Identification and selection of cows and heifers in hunting: Guidelines. Kharkiv: Institute of Animal Science of the National Academy of Agrarian Sciences of Ukraine.
[7] Denisenko, S.V., Darii, A.S., Kononenko, M.I., & Zerova-Lyubimova, T.E. (2008). Genetics of reproduction. Kyiv: Queen-TA.
[8] Directives of the European Parliament and of the Council of the European Parliament on the protection of animals used for scientific purposes. (2010, September). Retrieved from https://eur-lex.europa.eu/LexUriServ/ LexUriServ.do?uri=OJ:L:2010:276:0033:0079: EN:PDF.
[9] DSTU B B.2.1-16: 2009. Soils. “Methods of laboratory determination of organic matter content”. (2010, December). Retrieved from http://online.budstandart.com/ru/catalog/doc-page?id_doc=27801.
[10] Emre, B., Korkmaz, O., & Koyuncu, I. (2021). Determination of thiol/disulphide homeostasis as a new indicator of oxidative stress in dairy cows with subclinical endometritis. Veterinarski Archiv, 91(2), 137-148. doi: 10.24099/vet.archiv.0914.
[11] Gonchar, A.O. (2014). Research of cervical mucus of highly productive Holstein cows. Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies, 16(3(60)), 64-73.
[12] Hernandez-Castellano, L.E., Hernandez, L.L., & Bruckmaier, R.M. (2020). Review: Endocrine pathways to regulate calcium homeostasis around parturition and the prevention of hypocalcemia in periparturient dairy cows. Animal, 14(2), 330-338. doi: 10.1017/S1751731119001605.
[13] Kim, I.H., Kang, H.G., Jeong, J.K., Hur, T.-Y., & Jung, Y.H. (2014). Inflammatory cytokine concentrations in uterine flush and serum samples from dairy cows with clinical of subclinical endometritis. Theriogenology, 82, 427-432. doi: 10.1016/j.theriogenology.2014.04.022.
[14] Kraevsky, A.Y., Sokoluk, V.M., Chekan, O.M., Travetsky, M.O., & Ligomina, I.P. (2020). Homeostasis indicators in cows before ostrus synchronization and their influence on the fertilization rate. Ukrainian Journal of Ecology, 10(6), 112-117. doi: 10.15421/2020_268.
[15] Law of Ukraine No. 3447-IV “On the Protection of Animals from Brutal Treatment”. (2021, August). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/3447-15#Text.
[16] Maksymyuk, G.V., Vorobets, Z.D., & Maksymyuk, V.M. (2019). Stages of control of the vector of changes in homeostasis of the components of the system environment — cell (substance): guidelines. Lviv.
[17] Maksymyuk, V.M., Maksymyuk, G.V., & Vorobets, Z.D. (2021). Cell, environment, homeostasis. Lviv: SPOLOM.
[18] Mounir, A., Paul, K., & Aspinas, C. (2018). Improved detection of biomarkers in cervico-vaginal mucus (CVM) from postpartum cattle. BMC Veterinary Research, 14, article number 297. doi: 10.1186/s12917-018-1619-5.
[19] Regulations of Bila Tserkva National Agrarian University on the Treatment of Animals for Scientific Purposes. (2018, May). Retrieved from https://btsau.edu.ua/sites/default/files/news/pdf/pologenua_povodgenua_z_tvarinami.pdf.
[20] Roder, M.C., & Matthew, C.L. (2018). Uterine inflammation affects the reproductive performance of dairy cows: A review. Agronomia Mesoamericana, 29(2), 449-468. doi: 10.15517/ma.v29i2.29852.
[21] Sharaf, M.A., Illman, D.L., & Kowalski, B.R. (1989). Chemometrics. Leningrad: Chemistry.
[22] Sheldon, I.M., Molinari, P.C.C., Ormsby, T.J.R., & Bromfield, J.J. (2020). Preventing postpartum uterine disease in dairy cattle depends on avoiding, tolerating and resisting pathogenic bacteria. Theriogenology, 150, 158-165. doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.01.017.
[23] Srinivasan, M., Adnane, M., & Archunan, G. (2021). Significance of cervico-vaginal microbes in bovine reproduction and pheromone production — A hypothetical review. Research in Veterinary Science, 135, 66-71. doi: 10.1016/j.rvsc.2021.01.003.
[24] Willams, E.J., Ficher, D.P., Pfeiffer, D.U., England, K.C.W., Noakes, D.E., Dobson, H., & Sheldon, I.M. (2005). Clinical evaluationof postpartum vaginal mucus reflects uterine bacterial infection and the immune response in cattle. Theriogenology, 63, 102-117.
[25] Word Health Organisation. (2000). WHO manual for the standardised investigation and diagnosis of the infertile couple. Cambridge: Cambridge University Press.
[26] Сharonis, G., & Larson, P.G. (2006). Use of pH/whiff test or quickvue advanced ph and amines test for the diagnosis of bacterial vaginosis and prevention of postabortion pelvic inflammatory disease. Acta Obsted Gynecol Scand, 85, 837-843. doi: 10.1080/00016340600589776.