Гербіцидна дія Chenopodium murale та залишків Coronopus didymus Sm. проти проростання та раннього росту Hordeum vulgare
Анотація
У цьому дослідженні розглядаються загальні проблеми тих видів бур’янів, які негативно впливають на продуктивність сільськогосподарських культур у великих масштабах. Мета роботи – дослідити вплив висушеного коріння Chenopodium murale та Coronopus didymus на проростання насіння та ранній ріст Hordeum vulgare. Експеримент проводили у рандомізованому блочному плані з трьома повтореннями в умовах теплиці в горщиковій культурі. Пагони і коренеплоди окремо сушили в тіні протягом 15-20 днів, сухі порошкоподібні залишки пагонів і коренів C. murale і C. didymus вносили в дозах 5 і 10 г кг-1 на насіння ячменю в 6” горщиках з контролем протягом трьох тижнів. Залишки пагонів C. didymus (10 г) найбільше пригнічували проростання (31,16%), GVI (0,85), SVI (4,90) та площі листя (3,94 см2) ячменю, а 5 г кореневих залишків бур’яну мали найменш виражену дію. Довжина кореня, довжина пагона та суха біомаса найбільше пригнічувалися C. murale 10 г при обробці як пагонів, так і кореневих залишків. Залишки пагонів пригнічували проростання та ріст, ніж залишки коренів обох бур’янів. Патерни накопичення хлорофілу показали неоднозначні результати, у деяких зразках їх концентрація навпаки посилювалася. Обробка коренів загалом була більш гальмівною, ніж обробка пагонів. Усі оброблені проростки демонстрували вищі рівні накопичення проліну порівняно з контролем. При меншій дозі застосування C. murale було більш інгібуючим, ніж застосування C. didymus. Існує великий обсяг досліджень цих видів, щоб виділити та ідентифікувати активні фактори, а також зрозуміти їх вплив на біоконтроль бур’янів, крім їх потенційного негативного впливу на сільськогосподарські культури, особливо зернові культури, які можуть бути корисними для збільшення виробництва сільськогосподарських культур. на півночі Індії, а саме в Уттар-Прадеші
Ключові слова
сільськогосподарська діяльність, алелопатія, схожість насіння, оцінка проліну, виробництво біомаси, залишки бур'янів
[1] Bhular, D.D., Netzer, D.I.A., Riemenschneider, D.E., & Hartzler, R.G. (1998). Weed management in short rotation popular and herbaceous perennial crops grown for biofuel production. Biomass and Bioenergy, 14(4), 385-394. doi: 10.1016/S0961-9534(97)10075-7.
[2] Kadioglue, I., Yanar, Y., & Asav, U. (2005). Allelopathic effects of weed leachates against seed germination of some plants. Journal of Environmental Biology, 26, 169-173.
[3] Zeng, R.S., Mallik, A.U., & Luo, S.M. (2008). Allelopathy in sustainable agriculture and forestry. New York: Springer Press. doi: 10.1007/978-0-387-77337-7.
[4] Soleymani, A., & Shahrajabian, M.H. (2011). Influence of planting date and plant density on grain and biological yields of barley cultivars. Research on Crops, 12, 698-700.
[5] Guertin, P. (2003). USGS weeds in the west project: Status of introduced plants in Southern Arizona parks. Arizona: University of Arizona.
[6] Verma, S., & Agarwal, P. (1985). Phytochemical investigation of Chenopodium album Linn. and C. murale Linn. National Academy of Sciences, Science Letters, 8(5), 137-138.
[7] Prabhakar, K.R., Srinivasan, K.K., & Rao, P.G.M. (2002). Chemical investigation, anti-inflammatory and wound healing properties of Coronopusdidymus. Pharmaceutical Biology, 40(7), 490-493. doi: 10.1076/phbi.40.7.490.14684.
[8] Bones, A.M., & Rossiter, J.T. (1996). The myrosinase-glucosinolate system, its organisation and biochemistry. Physiologia Plantarum, 97, 194-208. doi: 10.1111/j.1399-3054.1996.tb00497.x.
[9] AOSA. (1990). Rules for testing seeds. Journal of Seed Technology, 12, 1-112.
[10] AOSA. (1983). Seed vigour hand texting book. Contribution No. 32 to the handbook on seed testing. Ithaca: Association of Official Seed Analysis.
[11] Abdul-baki, A.A., & Anderson, J.D. (1973). Relationship between decarboxylation of glutamic acid and vigour in soyabean seed. Crop Science, 13, 222-226. doi: 10.2135/cropsci1973.0011183X001300020023x.
[12] Taghipour, F., & Salehi, M. (2008). The study of salt tolerance of Iranian barley (Hordeum vulgare) genotype in seedling growth stages. Biological Diversity and Conservation, 172, 53-58.
[13] Arnon, D.I. (1949). Copper enzyme in isolated chloroplasts: Polyphenol oxidase in Beta vulgaris. Plant Physiology, 24, 1-15. doi: 10.1104/pp.24.1.1.
[14] Bates, L.R.P., Waldren, R.P., & Teare, I.D. (1973). Rapid determination of free proline for water-stress studies. Plant and Soil, 39, 205-207. doi: 10.1007/BF00018060.
[15] Gholami, B.A., Faravani, M., & Kashi, M. (2011). Allelopathic effects of aqueous extract from Artemisia kopetdaghensis and Satureja hortensis on growth and seed germination of weeds. Journal of Applied Environmental and Biological Science, 9, 283-290.
[16] Enyew, A., & Nagapan, R. (2015). Allelopathic effect of Lantana camara L. leaf powder on germination and growth behaviour of maize, Zea mays Linn. and wheat, Triticum turgidum Linn. cultivars. Asian Journal of Agriculture Science, 7, 4-10. doi: 10.19026/ajas.7.5154.
[17] Dafaallah, A.B., & Ahmed, S.A. (2017). Allelopathic effects of sweet basil (Ocimum basilicum L.) on seed germination and seedling growth of some poaceous crops. International Journal of Environment, Agriculture and Biotechnology, 2, 2629-2635.
[18] Nekonam, M.S., Razmjoo, J., Sharifnabi, B., & Karimmojeni, H. (2013). Assessment of allelopathic plants for their herbicidal potential against field bindweed (Convolvulus arvensis). Australion Journal of Crop Science, 7, 1654-1660.
[19] Al-Johani, N.S., Aytah, A.A., & Boutraa, T. (2012). Allelopathic impact of two weeds, Chenopodium murle and Malva parviflora on growth and photosynthesis of barley (Hordeum vulgare L.). Pakistan Journal of Botany, 44, 1865-1872.
[20] Shafique, S., Bajwa, R., Shafique, S., & Javaid, A. (2011). Herbicidal effects of aqueous extracts of three Chenopodium species on Avena fatua. African Journal of Biotechnology, 10, 6492-6496.
[21] Gautam, D.K., Kumari, M., D’Souza, R.J., & Agnihotri, R.K. (2018). Allelopathic effect of Chenopodium murale (L.) and Coronopus didymus (L.) Sm. on germination and seedling growth of Hordeum vulgare (L.). Research Journal of Agricultural Science, 9, 273-276.
[22] Koodkaew, I., & Rottasa, R. (2017). Allelopathic effects of giant sensitive plant (Mimosa pigra) leaf powder on germination and growth of popping pod and purslane. International Journal of Agriculture Biology, 19, 1113-1118. doi: 10.17957/IJAB/15.0392.
[23] Al-Taisan, W.A. (2014). Allelopathic effects of Heliotropium bacciferum leaf and roots on Oryza sativa and Teucrium polium. Life Science, 11, 41-50.
[24] Vaithiyanathan, T., Soundari, M., Rajesh, M., Ganesh, K.S., & Sundaramoorthy, P. (2014). Allelopathic effect of Azadirachta indica L. on the germination of Abelmoschus esculentus L. International Letters of Natural Sciences, 10, 13-22. doi: 10.18052/www.scipress.com/ILNS.15.13.
[25] Khaliq, A., Hussain, S., Matloob, A., Wahid, A., & Aslam, F. (2015). Aqueous swine cress (Coronopus didymus) extracts inhibit wheat germination and early seedling growth. International Journal of Agriculture Biology, 15, 743-748.
[26] Shruthi, H.R., Kumar, N.K.H. & Jagannath, S. (2014). Allelopathic potentialities of Azadirachta indica A. Juss. aqueous leaf extract on early seed growth and biochemical parameters of Vigna radiata (L.) Wilczek. International Journal of Latest Research in Science and Technology, 3, 109-115.
[27] Oyeniyi, E.A., Gbaye, O.A., & Holloway, G.J. (2016). Interactive effect of cowpea variety, dose and exposure time on bruchid tolerance to botanical pesticides. African Crop Science Journal, 23, 165-175.
[28] Christobel, R.G.J., Sundar, J.S., Abirami, M.P., & Maheswari, A. (2017). Allelopathic potential of Carica papaya leaf extraction growth and biochemical constituents of Phaseolus aureus. International Journal of Recent Advanced in Multidisciplinary Research, 4, 2555-2560